内蒙古tRNA甲基化

云序生物对O8GRNA氧化化检测手段为O8G-IP-Seq技术，技术原理如下：将O8G特异性抗体与被随机打断的RNA的片段进行共孵育，抓取有O8G修饰的片段进行测序；同时需要平行测序一个对照（Input）样本，对照样本只含有打断的RNA的片段，并不添加O8G特异性抗体与其共孵育。对照样本用于消除非特异性抓取的O8G片段的背景。对比免疫共沉淀（IP）样本和对照样本（Input）中的序列片段，将O8G氧化修饰位点定位到转录组上，并根据RNA-seq数据，计算样本中O8G氧化程度及对RNA表达水平的影响。近两年高影响因子文章不断，是继m6A修饰之后的又一表观转录组学热点。内蒙古tRNA甲基化

案例3：拟南芥m5CRNA甲基化谱及TRM4B酶对根的影响原文：Transcriptome-WideMappingofRNA5-MethylcytosineinArabidopsismRNAsandNoncodingRNAs期刊：ThePlantCell影响因子：8.23与上篇不同，本研究团队采用m5CRNA甲基化测序研究拟南芥中m5C甲基化谱，在种子，幼芽，根中发现了1000多个特异性的位点。敲低RNAm5C甲基转移酶TRM4B，造成tRNA稳定性的降低。研究人员还证实TRM4B突变体的初级根比野生型更短，同时对氧化的应激反应更敏感。西藏超微量RNA甲基化研究表明，m7G RNA甲基化修饰存在于各类分子中。

技术简介2’-O-RNA甲基化是一种受RNA甲基化酶或纤维蛋白酶作用下，核糖RNA在2’位置上发生甲基化的化学修饰。在哺乳动物、酵母、植物、病毒等物种中普遍存在。已有研究表明，2’-O-RNA甲基化修饰在mRNA、tRNA、rRNA、miRNA等分子上分布。从结构上，2’-O-RNA甲基化通过提高核苷酸的疏水性，从而增强其稳定性。已有研究表明，2’-O-RNA甲基化影响mRNA与蛋白的结合、调控rRNA翻译效率、参与tRNA识别等生物过程。近年来，2’-O-RNA甲基化修饰作为一类新型RNA甲基化，高影响因子文章不断，是继m6A修饰之后的又一表观转录组学热点。

m6A是真核生物中较常见的RNA修饰，被认为是一种新的表观遗传标记，参与多种生物过程。m6A调控几种主要人类病毒性疾病的模式和功能已经有报道。然而，m6A在植物病害暴发中的分布模式和作用尚不清楚。在此，作者分析了两种破坏性的病毒感ran水稻植株中的m6A修饰情况。发现m6A甲基化主要与病毒gan染水稻植株中表达不活跃的基因有关。作者还检测到同一基因上不同的m6A峰分布，这可能是水稻条纹病毒和水稻黑条纹矮病毒感ran之间存在不同抗病毒模式的原因。有趣的是，病毒感ran后水稻m6A甲基化水平增加。2’-O-RNA甲基化修饰在mRNA、tRNA、rRNA、miRNA等分子上分布。

原文：METTL4catalyzesm6AmmethylationinU2snRNAtoregulatepre-mRNAsplicing期刊：NecleicAcidsResearch影响因子：16.48新加坡南洋理工大学的研究人员通过人类全转录组RNA甲基化测序，在Mettl4敲除组与野生型对照组之间寻找出m6Am相对甲基化水平的差异位点，其中U2snRNA的第30位RNA残基有明显的m6Am修饰水平差异。进一步的FLAG-tag融合蛋白实验证明，METTL4蛋白直接催化了U2snRNA上的m6Am甲基化修饰的发生。METTL4过表达实验发现，其催化的RNA内部m6Am修饰位点具有HMAGKD的序列motif特征（H=A/C/U,M=A/C,K=G/U,D=A/G/U）。在Mettl4敲除的人类细胞中，因为U2snRNA无法完成m6Am修饰，故而对snRNA的pre-mRNA剪接功能产生了诸多影响。环状RNA也会被m6A甲基化修饰，并会促进环状RNA编码蛋白这一有趣的结论。辽宁比色法检测整体甲基化

ctDNA 的 5mC 甲基化修饰研究仍然是一个未被充分探索的领域。内蒙古tRNA甲基化

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