合肥m6A环状RNA测序

机体的整个生物学环境会影响m6A通路，并且决定了m6A的功能。一方面，不同的细胞，以及环境刺激能影响m6A这些效应器自身的表达水平，PTM以及细胞定位。例如，在多数细胞系中，m6A的去甲基化酶(demethylase)FTO主要位于细胞核，并且参与5%-10%的的mRNA的m6A去甲基化，但是在某些淋巴瘤细胞系中，这个比例达到40%。另一方面，RNA分子自身的异质性又增加了m6A的研究难度，这是因为：①RNA种类繁多，包括mRNA，tRNA，rRNA，以及其它大量的非编码RNA；②不同类型的细胞中的RNA丰度不同；③RNA存在着复杂的二级结构；④RNA存在着不同的转录状态（例如非活跃时，RNA与组蛋白紧密结合，转录活跃时，则与组蛋白松开）；⑤RNA中的顺式/反式作用元件（例如一些RNA结合蛋白，RBP, RNA binding proteins）会调控m6A效应子与RNA底物。因此说，m6A的活动与环境紧密相关。m1A多篇齐发：除了m6A，还有哪些热门RNA修饰？合肥m6A环状RNA测序

既然 FTO 敲降所导致的 c-Myc 蛋白的表达水平上升并不是由 MYC mRNA 表达水平的变化造成的，那么造成这一现象的原因会是什么呢？会不会是 mRNA 翻译调控呢？YTHDF1 是一种典型的 RNA m6A 甲基化识别蛋白（也就是 m6A 的 “Reader”）。用 anti-YTHDF1 抗体进行 RIP 实验，发现 FTO 的敲降将会增强 YTHDF1 与 MYC mRNA 的结合。虽然敲降 YTHDF1 并没有影响 MYC mRNA 的表达水平，但却能降低 c-Myc 蛋白的表达水平。在上一段中发现的 FTO 的敲降所导致的 c-Myc 蛋白表达水平的上升，还会被 YTHDF1 的敲降所逆转，说明 YTHDF1 发挥功能的位置在 FTO 的下游和 c-Myc 的上游 。综上可知，FTO 表达下调所导致的 MYC mRNA 高水平 m6A 修饰，可被 YTHDF1 识别并结合，从而促进 MYC mRNA 翻译为 c-Myc 蛋白。株洲分析m6AN6-甲基腺苷（m6A）是哺乳动物mRNA中普遍存在的表观遗传学标记。

首先，作者发现了肺腺ai当中 m6A 去修饰化酶 FTO 的异常低表达，就此选定 FTO 这个酶为研究对象。紧接着，作者敲降 FTO 以控制变量，以研究 FTO 这个酶在肺腺ai中所发挥的功能。下一步，作者从上游和下游两个方向筛选出与 FTO 基因或 FTO蛋白发生互作的分子：一方面，通过一系列 Co-IP、ChIP 和荧光素酶报告实验，作者证明 FTO 基因是 Wnt 信号通路的靶基因，Wnt 诱导的 EZH2/β-catenin/LEF/TCF 复合体结合于 FTO 基因启动子区域的 TBE 元件区域，通过组蛋白 H3K27me 的甲基化抑制了 FTO 基因的转录；另一方面，通过 m6A MeRIP-seq 和生信预测，作者筛选出 MYC 作为 FTO 蛋白的靶基因，并通过一系列的 MeRIP-qPCR、RIP 和荧光素酶报告实验，证明 c-Myc 蛋白的表达量是跟随 FTO 蛋白表达量变化的因变量。

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MeRIP-Seq数据集的分析揭示了m6A与miRNA结合位点之间的存在着很强的相关性。含有m6A峰的67％的3'UTR也含有至少一个TargetScan预测的miRNA结合位点。因为大约30％的基因在其3'UTR中具有miRNA结合位点，所以这是显着增强的关联。重要的是，m6A峰和microRNA位点不重叠。通常，m6A峰在终止密码子附近是较丰富的，并且通常沿3'UTR长度频率降低，而microRNA靶位点在3'UTR的5'和3'末端富集.m6A在3'UTR和miRNA结合位点的存在提示了mRNA甲基化和microRNA之间的相互作用。确定腺苷甲基化是否有助于microRNA诱导的mRNA沉默的作用将是重要的。m6A 全转录组测序,m6A LncRNA测序。济南m6A环状RNA测序

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