基于CRISPR/Cas9技术，我们拥有独有的全基因组单/多位点分析设计系统、高通量的gRNA载体组装技术、高效的遗传转化技术和基于云端的测序结果自动化分析体系；具有单基因/多基因敲除、短片段/长片段删除、单碱基/多碱基替换敲入和条件性敲除等多面的基因组编辑技术。特点：简单——只需提供基因ID或序列快速——快50个工作日提供Founder小鼠，全年提供全程服务高效——特有的技术，实现单基因、多基因敲除，条件性敲除，大片段（例如整个外显子区域或者lncRNA）敲除，DNA片段定点敲入（包括定点突变、GFP等标签Tag的敲入）常州卡文斯实验鼠的遗传背景清晰，实验数据更具可比性。实验小鼠高尿酸血症
卡文斯有专业的小鼠代理繁育团队，丰富的项目经验拥有10年以上SPF级动物饲养与管理经验，为国内外闻名院校、医院等提供服务，客户遍布全国各地区专业的技术团队，保障动物质量专业的项目管理体系，实时跟进小鼠繁育进程，定期项目数据反馈业务优势：严格的饲养条件温度20-26°C相对湿度40-70%噪音≤60dB氨浓度15次/小时昼夜明暗交替12h/12h严格的饲养管理要求饮用水高压灭菌后的酸化水的酸化水，PH值在、垫料及饮水的更换频率至少每周一次，所有的脏笼具，水瓶浸泡井通过高压水枪清洗后，均经高压灭菌后方可进入屏障设施，其他不能进行高压灭菌的物品则通过严格的消毒流程进入。动物的日常检查生长情况的日常观察及异常情况反馈多面的质量监测检测内容检测手段检测周期小鼠（哨兵鼠）病原委外/自检每季度1次/每月1次小鼠饲料无菌检测委外/自检每批次小鼠饮水无菌检测委外/自检每季度1次/每月1次小鼠垫料无菌检测委外/自检每季度1次/每月1次消毒效果验证。裸鼠常见问题常州卡文斯实验鼠在神经科学领域的研究中表现优异。
腹腔注射腹腔注射虽然简单，也有翻车的危险。一针下去，扎到内脏，呜呼哀哉。先将小鼠腹腔注射操作要点总结如下：抓鼠后选择低尾高位的位置；选择下腹部腹中线进针；小于60度进针有落空感；回抽未见血后推针，旋转半圈拔针。腹腔注射适合刺激性小的水溶性药物的用药，利用腹腔膜及大小网膜血管丰富，吸收面积大等特点，使药物快速入血。注意事项：1、腹腔注射只宜用等渗药液（如5％葡萄糖液、0.9％生理盐水）适当配无刺激性的药物（如肌苷、维生素B1、维生素C），而且注射量不宜太大，注射药液温度应与体温相近。2、注射时，小鼠头部要呈低位，使内脏向胸部侧偏移，针头不宜过长，以防止刺伤肠道、膀胱或其它内脏身体部位。3、进针时不要犹豫，切勿为避免刺伤身体部位，针头刚插入皮肤就向上挑起，此时针头极有可能还没刺破腹腔壁，只是将液体注射在腹部皮下。
SD(SpragueDawley）大鼠主要用途：广阔用于药理、毒理、药效及GLP实验，营养学及内分泌系统的研究。简介：1925年，美国斯泼累格。多雷(SpragueDawley)农场用Wistar大鼠培育而成。生长快，繁育性能好，大多用于安全性试验及营养与生长发育有关的研究。特点：头部狭长、尾长接近于身长，产仔多，生长发育较Wistar为快。10周龄时雄鼠体重可达300~400g,雌鼠达180~270g。性情比Wistar大鼠稍为凶猛。对疾病的抵抗力较强，尤其对呼吸道疾病的抵抗力很强。自发性肿块瘤体的发生率较低。对性内分泌物质敏感性高。卡文斯实验鼠在神经科学领域的研究中表现优异。
BALB/c-nu裸鼠主要用途：广泛应用于zhong瘤学、免疫学、毒理学等基础医学和临床医学的研究。简介：1973年丹麦的C.W.Friis在BALB/cA近交系小鼠中发现自发性突变的无毛小鼠，该突变小鼠胸腺发育不良，免疫T细胞缺失，而培育成了BALB/cA-nu。特点：无毛、裸鼠、无胸腺。随着年龄增长，皮肤逐渐变薄、头颈部皮肤出现皱折、生长发育迟缓。由于无胸腺而只有胸腺残迹或异常胸腺上皮(该上皮不能使T细胞正常分化)，导致缺乏成熟的T淋巴细胞，因而细胞免疫功能低下。但6～8周龄裸小鼠的NK细胞活性高于一般小鼠。B淋巴细胞正常，但其免疫功能欠佳。表现在B淋巴细胞分泌的免疫球蛋白以lgM为主，只含少量的IgG。抵抗力差，容易患病毒性肝炎和肺炎。因此必须饲养在屏障系统中。为了提高繁殖率和存活率，一般采用纯合型雄鼠与杂合型雌鼠交配的繁殖方式，可以获得1/2纯合型仔鼠。常用裸小鼠品系：BALB/c-nu、NIH-nu、NC-nuSwiss-nu、03H-nu、C57BL-nu等。卡文斯实验鼠的微生物学检测涵盖细菌、病毒、寄生虫等指标。神经科学实验小鼠
基于CRISPR/Cas9技术，卡文斯实验鼠配套提供病理检测、基因型鉴定等增值服务。实验小鼠高尿酸血症
实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。实验小鼠高尿酸血症
