什么是免疫组化怎么选择

免疫组化染色呈阴性结果的原因有哪些？

1、抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误。不是抗体浓度越高就越易出现阳性结果，抗原抗体反应有前带和后带效应，必须摸索比较好浓度。

2、抗原修复不全，对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位，以利于与抗体结合；建议微波修复用高火4次*6min试试。有人做过实验，这是比较好的时间和次数。若不行，还可高压修复。

3、组织切片本身这种抗原含量低。

4、血清封闭时间过长。

5、DAB孵育时间过短。

6、细胞通透不全，抗体未能充分进入胞内参与反应。

7、开始做免疫组化，建议一定要首先做个阳性对照片，排除抗体等问题。 英瀚斯生物自有专业病理染色实验室，可做免疫组化。什么是免疫组化怎么选择

在临床应用中，免疫组化还可以进一步分类不同qi官与组织交界处cancer。由于重叠的特征，在一些组织qi官交界处的cancer，只凭组织学基础对cancer进行分类很困难。如胃肠道梭形细胞肉瘤是肌肉起源的平滑肌肉瘤，是间质起源的胃肠道间质瘤(GIST)，还是神经起源的神经鞘瘤;同样发生于组织交界处的cancer有睾丸胚胎cancer与精原细胞cancer，两者较难区别，且医疗与预后明显的不同，但用免疫组化检测角蛋白就较易于区别:角蛋白阴性则为精原细胞cancer，而角蛋白阳性则为胚胎cancer。青海免疫组化推荐南京有靠谱的能做免疫组化的公司吗？

免疫组化实验注意事项总结：

Ø本实验室所用切片一般是石蜡切片。

Ø烘片：使蜡片水分蒸发，石蜡软化，组织切片牢固贴在玻片上；烘片至跟烘片前透明度有差异。

Ø抗原修复时，使片子始终浸没在修复液中，液体不能干。

Ø一抗孵育在37度培养箱，湿盒放置1h，省时间和结合效果好，不要超过1h，容易过染。

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Ø二抗使用：两个二抗放大信号或一个二抗；若抗体信号强，可不用放大信号，尽量增大信噪比。

Ø10XDAB在常温溶解，尽可能现用现配，放于4度储存时间久了效果不佳。

Ø复水和脱水时所用的梯度酒精不可混用，要区分开。

Ø加抗体和显色液时，都要将片子甩干，在半干半湿的状态下再加，不然容易造成溶液的二次稀释。

Ø整个操作过程中在显色之前，一定不能干片。

免疫组化的实验步骤

免疫组化的实验步骤通常包括组织固定、切片、抗原修复、封闭、一抗孵育、二抗孵育、显色和复染等。首先，组织样本需要经过固定（如福尔马林固定）以保持其形态结构。然后，将固定后的组织包埋在石蜡中并切成薄片。抗原修复是为了暴露被固定过程掩盖的抗原表位，常用的方法有热修复和酶消化。封闭步骤是为了减少非特异性结合，通常使用血清或BSA。一抗孵育是关键步骤，一抗与目标蛋白特异性结合。二抗孵育则是通过二抗与一抗结合，并连接显色系统。，通过显色和复染使目标蛋白可视化。 免疫组化常见问题原因分析！

免疫组化的显色系统

免疫组化的显色系统是将抗原-抗体反应转化为可见信号的关键步骤。常用的免疫组化显色系统有DAB（3,3'-二氨基联苯胺）和AEC（3-氨基-9-乙基咔唑）。DAB显色产生棕色沉淀，适用于光学显微镜观察。AEC显色产生红色沉淀，适用于光学显微镜观察，但不适合长期保存。此外，还有荧光显色系统，如FITC（异硫氰酸荧光素）和TRITC（四甲基罗丹明异硫氰酸酯），适用于荧光显微镜观察。选择合适的显色系统需要考虑实验目的和检测设备。 英瀚斯生物为您详解免疫组化实验指南！青海免疫组化推荐

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免疫组化原理及实验步骤——实验外包。众所周知，抗体与抗原之间的结合具有高度的特异性。免疫组化正是利用这一特性，即先将组织或细胞中的某些化学物质提取出来，以其作为抗原或半抗原去免疫实验动物，制备特异性抗体，再用这种抗体（第1抗体）作为抗原去免疫动物制备第二抗体，并用某种酶（常用辣根过氧化物酶）或生物素等处理后再与前述抗原成分结合，形成抗原 - 一抗 - 二抗复合物，将抗原放大，由于抗体与抗原结合后形成的免疫复合物是无色的，因此，还必须借助于组织化学方法将抗原抗体反应部位显示出来。通过抗原抗体反应及呈色反应，显示细胞或组织中的化学成分，在显微镜下可清晰看见细胞内发生的抗原抗体反应产物，从而能够在细胞或组织原位确定某些化学成分的分布、含量。什么是免疫组化怎么选择