腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。卡文斯实验鼠的微生物检测报告确保无特定病原体传染。GK大鼠数量
常用动物实验选择1.名称：KM小鼠主要用途：广泛应用于药理学、毒理学等领域研究以及药品、生物制品的生产与检定。简介：1926年美国Rockfeller研究所从瑞士引入白化小鼠培育成Swiss小鼠。1944年3月17日由汤飞凡教授从印度Hoffkine研究所引进Swiss小鼠，饲养在昆明国家防疫处。由于该小鼠起初引入地是昆明，故称之为昆明小鼠。解放后国家防疫处迁回北京天坛，更名为卫生部生物制品研究所。1950年小鼠随之引到北京天坛（检定所现址），当时保种9对。1953年10月移至北京东郊，1954年扩种，相继引到其他单位，现已遍布全国各地。特点：远交系小鼠，经50多年的选育，现在KM小鼠zl自发率极低。不同地饲养的昆明小鼠封闭群的生长发育与繁殖性能存在一定差异。但其共同特点是抗病力和适应力很强，繁殖率和成活率高。它在我国生物医学动物实验中约为小鼠总用量的70%。B/T免疫细胞缺失小鼠技术推广文斯实验鼠在代谢性疾病研究中的应用获得国内外高度认可。
实验鼠是指经人工培育，对其携带的微生物和寄生虫实行控制，遗传背景明确或者来源清楚，用于科学研究、教学、生产、检定以及其他科学实验的老鼠。实验鼠包括大鼠、小鼠、地鼠、豚鼠等，具有成熟早、繁殖能力强、对外来刺激敏感等特点。实验鼠是继人类之后第二种完成全基因组测序的哺乳动物，其基因组与人类高度同源，生理生化及生长发育的调控机理和人类基本一致，同时具有繁殖能力强、世代周期短、饲养成本低等特点，是目前应用较为广阔的实验动物之一，其他实验动物还包括实验猴子、实验兔子、实验猪等。随着基因工程技术的发展，特别是近年来以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术的普遍运用，使得大规模生产实验鼠成为可能，从而可以更加精细地模拟人类特定生理病理特征，在阐明生命机理规律、疾病诊断诊治完成完成疗程以及新药创制研发等方面具有不可替代的作用。
小鼠特性体型小，发育成熟时体重：雄性20~40g，雌性18~40g；面部尖突，长有19根长长的触须，耳耸立呈半圆形、眼大、鼻尖，尾长与体长约相等。尾部表皮覆有小角质鳞片。（大约200片鳞片）毛色因品系品种而异常见有：白色、野灰色、黑色、棕色、黄色、巧克力色和肉桂色等。近年来，基因工程技术不断实现突破，以CRISPR/Cas9为首的基因编辑技术得到了普遍运用，使实验鼠大规模生产成为可能，快速推动了实验鼠行业发展进程。与发达国家相比，我国实验鼠市场起步较晚，还处于发展早期，随着国内实验鼠企业培育技术逐渐成熟、产品种类愈加丰富，市场国产化率正在提升。常州卡文斯实验鼠的饲料营养均衡，严格符合国际实验动物饲养标准。
卡文斯隆重推出基于CRISPR/Cas9技术的小鼠基因组编辑服务！CRISPR(ClusteredRegularlyInterspacedShortPalindromicRepeats)/Cas(CRISPR-associated)是近几年出现的一种由RNA指导Cas核酸酶对靶向基因进行特定DNA修饰的技术。它是细菌和古细菌为应对病毒和质粒不断攻击而演化来的获得性免疫防御机制。此系统的工作原理是crRNA(CRISPR-derivedRNA)通过碱基配对与tracrRNA(trans-activatingRNA)结合形成tracrRNA/crRNA复合物，此复合物引导核酸酶Cas9蛋白在与crRNA配对的序列靶位点处剪切双链DNA，从而实现对基因组DNA序列进行编辑；而通过人工设计这两种RNA，可以改造形成具有引导作用的gRNA(guideRNA)，足以引导Cas9对DNA的定点切割。基于CRISPR/Cas9技术，常州卡文斯实验鼠运输全程温控，保障动物健康状态。B/T免疫细胞缺失小鼠价格合理
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小鼠的抓取固定1.小鼠的抓取（1）右手提起小鼠尾巴，将其放在鼠笼盖或其他粗糙表面上（2）小鼠向前挣扎爬行时，再用左手拇指和食指抓住鼠耳和颈部皮肤抓取固定时需注意:过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼;用力过小,动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习,熟练掌握。2.小鼠的固定（1）徒手固定用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。固定板固定鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。（3）固定架固定让小鼠直接钻入固定架里,封好固定架的封口,露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。GK大鼠数量
