实验鼠销售模式主要是直销模式,即企业直接面向终端客户,包括高校、医院等科研客户以及创新药企、CRO研发企业等工业客户。具体销售时,上述客户或其所属机构、课题组等直接下单。2021年,中国实验鼠产品和服务市场规模约为35亿元。其中,实验鼠行业发展受到国家基础科学研究经费投入、创新药物开发市场景气程度、基因工程技术迭代水平进步等多重因素影响。近年来,伴随着国家密集出台多项政策,实施医药创新驱动战略,带动了实验鼠产业的发展,市场增长速度较快。卡文斯实验鼠的繁育记录完整,确保科研可追溯性。裸鼠繁育

卡文斯隆重推出基于CRISPR/Cas9技术的小鼠基因组编辑服务!CRISPR(ClusteredRegularlyInterspacedShortPalindromicRepeats)/Cas(CRISPR-associated)是近几年出现的一种由RNA指导Cas核酸酶对靶向基因进行特定DNA修饰的技术。它是细菌和古细菌为应对病毒和质粒不断攻击而演化来的获得性免疫防御机制。此系统的工作原理是crRNA(CRISPR-derivedRNA)通过碱基配对与tracrRNA(trans-activatingRNA)结合形成tracrRNA/crRNA复合物,此复合物引导核酸酶Cas9蛋白在与crRNA配对的序列靶位点处剪切双链DNA,从而实现对基因组DNA序列进行编辑;而通过人工设计这两种RNA,可以改造形成具有引导作用的gRNA(guideRNA),足以引导Cas9对DNA的定点切割。基于CRISPR/Cas9技术,Ldlr小鼠构建常州卡文斯实验鼠在免疫缺陷模型应用中广受科研机构好评。

ICR小鼠主要用途:已选为某些生物制品检定的法规动物。广阔用于药理、毒理、**、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教学。中国科学院遗传研究所在1973年从日本国立**研究所引进;1979中国医学科学院分院动物中心引进;1978年北京检定所引进;1983年上海计划生育研究所从瑞士苏黎世毒理学研究所引进。特点:远交系小鼠,毛色白化。适应性强,体格健壮,繁殖力强,生长速度快,实验重复性较好,雌鼠自发性畸胎瘤和管状腺瘤发病率为0%~1%,用氨基甲酸乙酯诱发时,11~16天胚胎期畸胎瘤和管状腺瘤发病率为5.9%,离乳个体管状腺瘤和囊瘤发生率为30%,孕鼠为3%。是国际通用的封闭群小鼠,我国从美国、日本、英国、瑞士等国引进的ICR,各群体之间在遗传特性方面不可避免地出现了一些差异,在应用时应注意。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选,复制病理模型较常用的实验动物。外周血象和骨髓细胞,具有较好的稳定性,是良好的血液学实验用动物。
SD(SpragueDawley)大鼠主要用途:广阔用于药理、毒理、药效及GLP实验,营养学及内分泌系统的研究。简介:1925年,美国斯泼累格。多雷(SpragueDawley)农场用Wistar大鼠培育而成。生长快,繁育性能好,大多用于安全性试验及营养与生长发育有关的研究。特点:头部狭长、尾长接近于身长,产仔多,生长发育较Wistar为快。10周龄时雄鼠体重可达300~400g,雌鼠达180~270g。性情比Wistar大鼠稍为凶猛。对疾病的抵抗力较强,尤其对呼吸道疾病的抵抗力很强。自发性肿块瘤体的发生率较低。对性内分泌物质敏感性高。卡文斯实验鼠品系丰富,满足不同科研项目的需求。

腹腔注射腹腔注射虽然简单,也有翻车的危险。一针下去,扎到内脏,呜呼哀哉。先将小鼠腹腔注射操作要点总结如下:抓鼠后选择低尾高位的位置;选择下腹部腹中线进针;小于60度进针有落空感;回抽未见血后推针,旋转半圈拔针。腹腔注射适合刺激性小的水溶性药物的用药,利用腹腔膜及大小网膜血管丰富,吸收面积大等特点,使药物快速入血。注意事项:1、腹腔注射只宜用等渗药液(如5%葡萄糖液、0.9%生理盐水)适当配无刺激性的药物(如肌苷、维生素B1、维生素C),而且注射量不宜太大,注射药液温度应与体温相近。2、注射时,小鼠头部要呈低位,使内脏向胸部侧偏移,针头不宜过长,以防止刺伤肠道、膀胱或其它内脏身体部位。3、进针时不要犹豫,切勿为避免刺伤身体部位,针头刚插入皮肤就向上挑起,此时针头极有可能还没刺破腹腔壁,只是将液体注射在腹部皮下。常州卡文斯实验鼠广泛应用于药物研发、基因编辑等领域。高尿酸小鼠种类
常州卡文斯实验鼠运输采用恒温箱,保障动物福利。裸鼠繁育
腹腔注射操作步骤:1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上,提其尾巴中部,水平偏下往后轻拉,小鼠爪子会自然会抓住笼子,此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛,比较好是抓在小鼠的耳朵处,这样可以更好固定小鼠的头部,以防被咬。但是,切记力气不要过大,容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定,这样就可以将小鼠整个躯干固定好,注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置,如果小鼠躯干不能保持竖直,很容易扎到脏器,引起出血,影响实验。2.注射抓取小鼠后,应腹部向上,头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位,避免扎伤。右手持注射器,插入小鼠腹部,注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处,缓慢以45度左右进针,进针深度小于1cm,进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针:为了防止漏液,轻微旋转针头,再缓缓拔出。在实验前,准备酒精棉球,注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用,避免交叉染上。此外,注射前,也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤,可以明显辨别药物是否注射到腹腔,如果看到鼓包,就是注射到皮下了。裸鼠繁育