网格蛋白介导的内吞途径呼吸道合胞病毒（RSV）是导致婴幼儿***的主要病毒病原体。研究表明，网格蛋白介导型内吞途径是目前研究得较为透彻且经典的病毒入胞途径。其中网格蛋白在此途径中的地位很重要。通过针对网格蛋白重链的小干扰RNA（siRNA）抑制网格蛋白的表达，可以有效的抑制RSV***Hela细胞。这提示网格蛋白介导的内吞途径在病毒感染细胞过程中发挥重要作用，同时也暗示了在某些情况下，RNA转染试剂可能利用这一途径进入细胞21。二、小窝蛋白介导的内吞途径在研究非病毒载体用于小干扰RNA（siRNA）递送时发现，将用组氨酸和半胱氨酸修饰的HIV-1Tat肽（mTat）与聚乙烯亚胺（PEI）结合，并与阳离子两亲脂质基试剂INTERFERin（INT）组合成的杂合载体（mTat/PEI/INT）能高效递送siRNA。研究表明，FilipinIII和β-环糊精（小窝蛋白介导的内吞作用抑制剂）能***抑制mTat/PEI/INT/siRNA转染，而氯丙嗪（网格蛋白介导的内吞作用抑制剂）则不能抑制mTat/PEI/INT/siRNA转染。此外，mTat/PEI/INT在4°C时的转染效率明显低于37°C。这些结果表明，mTat/PEI/INT作为一种潜在的有吸引力的非病毒载体用于siRNA递送，其转染过程可能是通过小窝蛋白介导且依赖温度的内吞途径实现的。基因注射包括通过注射将所需的核酸物质直接输送到宿主细胞核中。polyplus转染试剂动物实验
考虑RNA需求较少的RNA需求可以降低实验成本，同时也可以减少对细胞的潜在毒性。比较不同试剂的RNA用量：不同的转染试剂可能需要不同量的RNA才能达到相同的转染效果。在选择比较好的RNA转染试剂并将其与电穿孔法进行病毒RNA的比较的研究中，某些商业转染试剂在适当优化后，细胞死亡少得多，RNA需求少，转染效率提高3。考虑实验规模：如果实验需要大量转染细胞，那么选择RNA需求较少的试剂可以降低成本。例如，在大规模的细胞培养实验中，选择RNA需求少的转染试剂可以节省成本和资源。四、考虑血清兼容性在有血清的情况下能够递送RNA的转染试剂可以简化实验操作，提高实验的可重复性。血清对转染的影响：一些转染试剂在有血清的情况下可能会降低转染效率，而另一些试剂则可以在血清存在的情况下正常工作。在比较不同商业RNA转染试剂将黄热病病毒（YFV）和丙型肝炎病毒（HCV）RNA复制子递送至Huh7细胞的能力的研究中，讨论了与高效转染相关的因素，以及在存在血清的情况下能够递送RNA的优势3。选择血清兼容的试剂：如果实验需要在有血清的条件下进行，那么选择血清兼容的转染试剂是必要的。例如，在一些细胞培养实验中，血清是细胞生长所必需的。 广东fugene转染试剂Severino et al.进行的研究也指出了阳离子脂质作为基因递送纳米载体的潜在毒性。
阳离子树状大分子和阳离子脂质作为转染试剂结合机制：阳离子树状大分子如第五代聚酰胺酰胺树状大分子（PAMAMG5）和阳离子脂质如N-[1-(2,3-二醇油酰氧基)]-N,N,N-三甲基丙烷丙烷磺酸甲酯（DOTAP）作为转染试剂时，通过与小干扰RNA（siRNA）结合形成纳米复合物来实现转染1216。其结合过程涉及多种理化特性的相互作用，如原子力显微镜、凝胶电泳、siRNA结合和释放测定以及大小和ζ电势测量等方法可用于表征试剂-siRNA纳米复合物的理化特性。高摩尔比的DOTAP和低摩尔比的PAMAM可以比商业试剂相对更好地敲除OCT4转录，说明它们在结合RNA分子方面具有特定的优势。这种结合机制可能与它们的阳离子性质有关，能够与带负电的RNA分子通过静电相互作用结合。作用特点：在小鼠胚胎干细胞中进行评估发现，这些转染试剂对短核酸转染具有适当效率，从临床角度来看，有助于将短核酸分配到干细胞疗法中。
转染时间：转染时间的长短也会影响转染效率。过长或过短的转染时间都可能导致转染效率降低。在阳离子脂质体Lipofectamine2000对PC12细胞的转染实验中，转染时间为6h时转染效率较高3。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好转染时间为24小时1。细胞接种密度：细胞接种密度也会影响转染效率。过高或过低的细胞接种密度都可能导致转染效率降低。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，2×105接种密度时转染效率比较高9。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好接种密度分别为1.5×104（每孔24孔板）1。血清的有无：血清的存在可能会影响脂质体转染效率。一些实验表明，血清可能会降低转染效率，而另一些实验则表明血清对转染效率没有影响。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，与含血清培养基相比，只有Siha细胞在无血清培养基中培养时在转染前获得了更高的转染效率（P＜0.01）1。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，血清在本实验室条件下并不影响转染效率。在转染中，DNA通常通过病毒或非病毒载体(如质粒)转运到宿主细胞中。
对细胞周期的影响：在微小RNA-1180转染肾*细胞的实验中，FCM结果显示，转染miR-1180后，位于G0/G1期的细胞比例明显增大，而位于S期和G2/M期的细胞比例明显下降，表明细胞周期被阻滞在G0/G1期1。对转染效率的影响：在脂质体介导RNA干扰质粒转染鸡成骨细胞条件的优化实验中，对转染前细胞融合度、质粒质量与脂质体体积比及转染时间进行优化，在荧光倒置显微镜下观察并计算转染效率。结果表明，在转染前细胞融合达到90％以上，质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高，并且在转染后48h转染效果比较好3。在筛选更优的脂质体转染试剂的实验中，分别用RNAiMax及MessageMax将modGFP转染入MEF细胞，流式分析发现MessageMax的转染效率为（83.33%±3.23%），略高于RNAiMax的（78.77%±6.12%），两者没有统计学差异，但是流式分析和荧光显微镜观察均表明MessageMax转染后1周内的蛋白翻译表达效率更高，是更高效的modRNA转染试剂8。
RNA 转染试剂的效果受到多种因素的影响，包括细胞类型、转染试剂种类、转染条件等。在实际应用中，需要根据具体的实验需求选择合适的转染试剂和优化转染条件，以提高转染效率并减少对细胞的毒性作用。 由于CRISPR/Cas的发现，基因组编辑领域经历了一场变革。广东fugene转染试剂
作为一般指导原则，建议使用早期传代的细胞以获得良好的转染效率，特别是涉及原代或干细胞的转染。polyplus转染试剂动物实验
在鲤上皮瘤细胞中的应用在鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究时，转染试剂和DNA的剂量以及取样时间缺乏统一的数据支持。选取两种常用转染试剂Lipofectamine®2000和FuGENE®HD进行多配组转染试验，在28℃，以35mm培养皿铺板，16μLLipofectamine®2000和4μgDNA在转染后48h达到比较高转染效率(±)%；12μLFuGENE®HD和4μgDNA在转染72h后转染效率达到(±)%。通过构建鲤高不饱和脂肪酸合成相关转录因子过氧化物酶体增殖物***受体蛋白α（PPARα）的EGFP标签载体进行验证，两种转染试剂分别获得了约4%和约8%的转染效率，并对下游脂肪酸去饱和酶2（fads2）基因的转录调控效应进行检测，结果为后续利用鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究提供了数据支持5。在巨噬细胞中的应用商业转染试剂Lipofectamine已***用于核酸的细胞质递送和与细胞内先天免疫传感器进行细胞源啮合，以触发I型干扰素（IFN）生产。然而，单独对IIFN响应的脂质切积胺的影响尚未详细研究。研究表明，Lipofectamine诱导在原始，I型IFN诱导依赖于干扰素调节因子（IRF）3和IRF7，并且部分需要达洛/白细胞介素-1受体-含有结构域的适配器诱导的干扰素-β。相比之下，转染试剂XFECT未***IIFN信令6。 polyplus转染试剂动物实验
