选择**适合的RNA转染试剂是一个复杂的过程，需要综合考虑多个因素。以下是一些关键的考虑因素和方法来帮助选择**适合的RNA转染试剂。一、考虑转染效率转染效率是选择RNA转染试剂的重要指标之一。较高的转染效率可以确保更多的细胞成功摄取和表达RNA。实验细胞类型：不同的细胞类型对转染试剂的敏感性可能不同。例如，一些细胞系可能更容易被某些转染试剂转染，而另一些细胞则可能对不同的试剂更敏感。在肾*细胞系786-O和ACHN中，微小RNA-1180（miR-1180）转染后，通过实时定量PCR和Westernblot等方法检测到p21mRNA和蛋白表达的变化，表明该转染在肾*细胞中有一定的效果1。在乳腺*细胞系T47D和非*性细胞MCF-10A中，研究比较了Lipofectamine2000和PAMAMG5两种转染试剂对短RNA的转染效率，结果显示Lipofectamine的转染效率明显高于PAMAMdendrimer2。检测方法：可以使用多种方法来检测转染效率，如荧光显微镜、流式细胞仪分析、实时定量PCR等。例如，在脂质体方法用于modRNA转染各种类型细胞的初步研究中，分别用RNAiMax及MessageMax将modGFP转染入MEF细胞，应用荧光显微镜、流式细胞分析仪检测并比较两种转染试剂的转染效率和蛋白表达效果5。在聚葡萄糖、精胺(PG)偶联物和第四代聚酰胺树状大分子(PAMAM G4)的帮助下。阳离子转染试剂帮转染
在核酸递送中的应用核酸***可以通过基因增强、基因抑制和基因组编辑实现持久甚至***的效果。然而，裸核酸分子难以进入细胞，阳离子聚合物作为非病毒核酸递送系统，其分子上带有正电荷基团，可浓缩核酸分子形成纳米颗粒，帮助核酸跨越屏障在细胞中表达蛋白质或抑制目标基因表达。阳离子聚合物易于合成、修饰和结构控制，是一类有前途的核酸递送系统7。在颅内递送合成mRNA中的应用在本研究中，使用常用的转染试剂建立了颅内递送合成mRNA的小鼠模型。将合成的荧光素酶mRNAs用两种不同的转染试剂包裹后定点微注射到大脑中，通过小动物成像系统监测递送的mRNA的表达状态，并通过行为和血液生化测量评估可能的试剂诱导的生物毒性。该模型表明，合成mRNA可以用常用的转染试剂成功递送到大脑中，且没有可测量的毒性，外源性mRNA的表达在颅内注射后在合理的时间内持续存在。合成修饰的TRAILmRNA也被用作***应用的例子9。广州转染试剂性价比高随着寡核苷酸生物合成产业的发展，不同类型的修饰寡核苷酸也被引入市场，以提高小RNA寡核苷酸转染的效率。
emlikiForestvirus相关细胞：利用基于SemlikiForestvirus的RNA和DNA向量研究非病毒细胞穿透肽递送载体PepFect6与阳离子脂质体Lipofectamine2000的转染效率，并评估它们对病毒复制的影响。结果表明，PepFect6***证明能够将大（13-19kbp）构建体转运穿过细胞膜。但使用PepFect6试剂递送的DNA分子被发现比使用Lipofectamine2000试剂递送的DNA分子晚约。***，虽然PepFect6和Lipofectamine2000试剂都可用于alphavirus研究，但PepFect6更受青睐，因为它不会引起正常细胞表型的变化，也不会影响先前转染细胞中病毒的正常复制***周期12。奶牛子宫内膜原代上皮细胞：应用带有FAM标记的miRNA-185mimics为报告基因，检测两种不同转染试剂（LipofectamineRNAiMAX与Lipofectamine2000）在细胞接种12、18、24h后的转染效率。结果显示，无论使用Lipofectamine2000还是LipofectamineRNAiMAX作为奶牛子宫内膜原代上皮细胞的转染试剂，各组间12h的转染效率均极***高于18、24h，18h的转染效率均极***高于24h；LipofectamineRNAiMAX各时间点的转染效率均极***高于Lipofectamine2000。使用LipofectamineRNAiMAX作为奶牛子宫内膜原代上皮细胞的转染试剂时，12h的荧光强度极***高于18、24h。
阳离子聚合物作为转染试剂结合机制：以阳离子聚合物EZTransCellReagent为例，在优化RNA干扰（RNAi）条件的研究中发现，阳离子聚合物通过与RNA分子结合来实现转染14。例如，设计针对GFP的shRNA，使用EZ转染试剂将其转染到细胞中，shRNA***降低了GFP的表达。预稀释的转染试剂在室温下以及小核酸的存在可增加转染效率，且在24小时时达到峰值。与环状核酸相比，线性核酸与阳离子聚合物结合时显示出更高的转染效率和更高的基因组整合率。作用特点：阳离子聚合物介导的RNAi条件优化后，为未来的RNAi研究提供了有用的数据。并被困在核内小体中，从这些囊泡结构中释放出来，进入核周区域，后进入细胞核。
在鲤上皮瘤细胞中的应用在鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究时，转染试剂和DNA的剂量以及取样时间缺乏统一的数据支持。选取两种常用转染试剂Lipofectamine®2000和FuGENE®HD进行多配组转染试验，在28℃，以35mm培养皿铺板，16μLLipofectamine®2000和4μgDNA在转染后48h达到比较高转染效率(±)%；12μLFuGENE®HD和4μgDNA在转染72h后转染效率达到(±)%。通过构建鲤高不饱和脂肪酸合成相关转录因子过氧化物酶体增殖物***受体蛋白α（PPARα）的EGFP标签载体进行验证，两种转染试剂分别获得了约4%和约8%的转染效率，并对下游脂肪酸去饱和酶2（fads2）基因的转录调控效应进行检测，结果为后续利用鲤上皮瘤细胞进行基因功能研究提供了数据支持5。在巨噬细胞中的应用商业转染试剂Lipofectamine已***用于核酸的细胞质递送和与细胞内先天免疫传感器进行细胞源啮合，以触发I型干扰素（IFN）生产。然而，单独对IIFN响应的脂质切积胺的影响尚未详细研究。研究表明，Lipofectamine诱导在原始，I型IFN诱导依赖于干扰素调节因子（IRF）3和IRF7，并且部分需要达洛/白细胞介素-1受体-含有结构域的适配器诱导的干扰素-β。相比之下，转染试剂XFECT未***IIFN信令6。 由于CRISPR/Cas的发现，基因组编辑领域经历了一场变革。polyplus转染试剂公司
基于病毒的转染，或者更具体地称为转导，涉及使用病毒载体将特定的核酸序列带入宿主细胞。阳离子转染试剂帮转染
优化电转方法筛选**适电压和脉冲时间：不同细胞种类电转所需的**适电压和脉冲时间不同。例如，人成纤维细胞电转modRNA的**适电压为440V，**适脉冲时间为30ms；Hela、293T、3T3细胞电转**适电压分别为425V、400V、440V，**适脉冲时间均为30ms；人/兔外周血来源的悬浮的单个核细胞的**适电压分别为840V和860V，**适脉冲时间均为20ms。通过筛选**适电压和脉冲时间，可以提高RNA转染效率，同时证明了电转法转染modRNA进入细胞的可行性，且可同时将两种modRNA导入同一个细胞内6。RNA电穿孔高效转染原代淋巴细胞：使用体外转录的mRNA通过电穿孔可以实现高基因转染效率和低转染相关毒性。例如，在用GFP或mCD62L转染的受激原代人和鼠T淋巴细胞中观察到90％以上的转基因表达和80％以上的活细胞。GFPRNA对未刺激的人PBMC或鼠脾细胞进行电穿孔，分别产生95％和56％的GFP⁺细胞。此外，基因表达迅速且持久，对经过RNA电穿孔的T淋巴细胞未观察到不良影响7。阳离子转染试剂帮转染
