对细胞活力的影响：一些研究表明，在阳离子脂质体LipofectamineTM2000介导下鸡TRPV6基因RNA干扰（RNAi）质粒转染入成骨细胞的实验中，当转染前细胞融合达到90％以上，质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高，并且在转染后48h转染效果比较好，对细胞的毒性作用较小3。在人肝瘤两种细胞模型中，通过比较LipofectamineRnaimax和Genmute转染剂发现，用基因***的细胞呈现荧光阴性对照siRNA的更高摄取，并且观察到与基因转染的细胞相对于脂质积rnaimax的细胞具有较高的活力6。有研究使用两种常见的RNA干扰（RNAi）转染试剂DharmaFECT1和INTERFERin，在模拟转染中使用非靶向siRNAs，结果表明这些试剂会引起HeLa细胞脂质组的变化，但功能影响仍有待研究，这也暗示在RNAi实验中使用适当的模拟转染对照非常重要。
在大肠杆菌细胞中复制的质粒通常含有二核苷酸频率为1:16的CpG基序，这与细菌DNA中的频率相似。重庆阳离子转染试剂
对于容易转染的贴壁细胞如人胚肾细胞（HEK293）和人宫颈*细胞（HeLa），脂质体转染效率相对较高。这些细胞具有较强的内吞能力，能够有效地摄取脂质体-核酸复合物。例如，在标准的转染条件下，HEK293细胞的转染效率可以达到50%-70%。而对于一些难转染的贴壁细胞，如原代肝细胞和某些神经细胞，其转染效率较低。这是因为它们的细胞膜结构比较复杂，可能存在较厚的糖萼或者紧密的细胞间连接，阻碍了脂质体-核酸复合物的进入。例如，原代肝细胞的转染效率可能只有10%-20%。
一般来说，贴壁细胞对脂质体的耐受性相对较好。但是，在高浓度脂质体转染的情况下，即使是耐受性好的细胞也会受到影响。例如，HeLa细胞在高浓度脂质体转染时，可能会出现细胞膜完整性受损，表现为细胞内乳酸脱氢酶（LDH）释放增加，细胞的代谢活动也会受到一定程度的干扰。对于难转染的贴壁细胞，由于其本身比较脆弱，较低浓度的脂质体也可能产生明显的细胞毒性。比如原代神经细胞，脂质体可能会破坏其精细的神经突起结构，影响细胞的正常生理功能。 广西广州转染试剂选择适合的 RNA 转染试剂是一个复杂的过程，需要综合考虑多个因素。
在人类多能干细胞衍生的心肌细胞（HPSC-CMs）中的应用低转染效率是实现HPSC-CMs在疾病建模和心脏修复研究中广泛应用的障碍。通过优化四个基本参数，即血清补充剂、复制和转染之间的时间、试剂与DNA比以及细胞密度，使用Promega的Viafect™转染试剂能够将HPSC-CMs转染至约95%的效率28。尽管活力有所降低，但转染后的HPSC-CMs仍保持了高纯度和结构完整性，确保了至少14天的转染基因持续表达，为心脏相关疾病的研究开辟了新机遇。在C2C12细胞中的应用C2C12细胞在肌肉领域***使用，但它们和原代成肌细胞一样难以转染，影响了下游实验。虽然自2015年以来超过95%的使用C2C12细胞的报告使用了一种金标准转染剂（如Lipofectamine®），但有研究表明其效率低于30%。通过比较五种商业试剂（Lipofectamine®3000、Viafect™、Fugene®HD、C2C12CellAvalanche®和JetOPTIMUS®）在C2C12细胞中的转染效率，发现通过优化DNA:转染剂比例和细胞密度，所有试剂都能达到超过60%的转染效率，且对细胞生长和活力影响有限。这些试剂还能在C2C12细胞中转染后高效生成GFP阳性的肌管，但在转染siRNA和对原代肌肉细胞的转染中表现出较低效率和较高毒性3。
对细胞周期的影响：在微小RNA-1180转染肾*细胞的实验中，FCM结果显示，转染miR-1180后，位于G0/G1期的细胞比例明显增大，而位于S期和G2/M期的细胞比例明显下降，表明细胞周期被阻滞在G0/G1期1。对转染效率的影响：在脂质体介导RNA干扰质粒转染鸡成骨细胞条件的优化实验中，对转染前细胞融合度、质粒质量与脂质体体积比及转染时间进行优化，在荧光倒置显微镜下观察并计算转染效率。结果表明，在转染前细胞融合达到90％以上，质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高，并且在转染后48h转染效果比较好3。在筛选更优的脂质体转染试剂的实验中，分别用RNAiMax及MessageMax将modGFP转染入MEF细胞，流式分析发现MessageMax的转染效率为（83.33%±3.23%），略高于RNAiMax的（78.77%±6.12%），两者没有统计学差异，但是流式分析和荧光显微镜观察均表明MessageMax转染后1周内的蛋白翻译表达效率更高，是更高效的modRNA转染试剂8。
RNA 转染试剂的效果受到多种因素的影响，包括细胞类型、转染试剂种类、转染条件等。在实际应用中，需要根据具体的实验需求选择合适的转染试剂和优化转染条件，以提高转染效率并减少对细胞的毒性作用。 流式细胞术可以更精确地定量表达特定荧光基因的细胞，以评估转染效率。
联合使用其他技术优化DNA和RNA转移的转染试剂在肌肉细胞中的应用：在C2C12细胞中，比较了五种商业转染试剂（Lipofectamine®3000、Viafect™、Fugene®HD、C2C12CellAvalanche®和JetOPTIMUS®）的转染效率7。通过优化DNA:转染剂比例和细胞密度，所有试剂都达到了超过60%的转染效率，且对细胞生长和活力的影响有限。然而，在C2C12细胞中优化的用于DNA转移的条件下，这些试剂对siRNA的转移效率较低，并且对原代肌肉细胞的毒性较高。这提示在使用转染试剂时，可以通过联合使用其他技术或优化转染条件，以提高转染效率并降低细胞死亡。例如，可以进一步研究不同试剂之间的联合使用，或者优化转染后的培养条件，以降低细胞毒性。综上所述，在不同细胞模型中提高RNA转染试剂的转染效率同时降低细胞死亡，可以通过选择合适的转染试剂、优化转染条件以及联合使用其他技术等方法来实现。未来的研究可以进一步深入探讨不同细胞模型中比较好的转染策略，以满足不同研究领域的需求。脂质复合物(CLNACs)通过网格蛋白参与的内吞作用进入细胞。河南PEI 转染试剂
作为一般指导原则，建议使用早期传代的细胞以获得良好的转染效率，特别是涉及原代或干细胞的转染。重庆阳离子转染试剂
考虑多因子转染能力如果实验需要同时转染多个RNA分子或进行共转染实验，那么选择具有多因子转染能力的试剂是重要的。共转染效果：一些转染试剂可以有效地实现多个RNA分子的共转染，而另一些试剂可能在共转染方面效果不佳。在脂质体方法用于modRNA转染各种类型细胞的初步研究中，MessageMax能将modGFP高效转染入多种细胞中，并实现modGFP和modmCherry在MEF细胞中的共转及核内因子nGFP和mTBX5在MEF细胞核中的定位5。选择适合多因子转染的试剂：根据实验需求，选择能够满足多因子转染要求的转染试剂。例如，如果实验需要同时转染多个基因或进行基因编辑实验，那么选择具有多因子转染能力的转染试剂可以提高实验效率。重庆阳离子转染试剂
