选择合适的转染试剂GenMute试剂在人肝*细胞模型中的应用：在人肝*细胞HepG2和Huh7.5中，研究对比了脂质体类的Lipofectamine™RNAiMAX和HepG2特异性的聚合物类GenMute™两种转染试剂30。通过细胞成像分析发现，GenMute处理的细胞对荧光标记的阴性对照siRNA的摄取高于LipofectamineRNAiMAX转染的细胞。并且，MTT实验表明，GenMute转染的细胞比LipofectamineRNAiMAX处理的细胞具有更高的存活率。这提示在人肝*细胞模型中，GenMute试剂可能是更适合的转染试剂，在提高转染效率的同时降低了细胞死亡。siRNA共轭壳聚糖纳米颗粒在脊髓损伤模型中的应用：在创伤性脊髓损伤（SCI）模型中，通过制备带有抗体靶向部分的siRNA共轭壳聚糖复合物，以抑制诱导型一氧化氮合酶（iNOS）的表达，该复合物主要靶向M1巨噬细胞31。实验结果表明，Ab-siRNA共轭壳聚糖纳米颗粒在体外***降低了M1极化巨噬细胞中的iNOS表达，具有高转染效率和低细胞毒性。在体内应用该纳米颗粒后，SCI后的iNOS表达和细胞凋亡均减少。这说明在特定的病理模型中，针对性设计的纳米颗粒转染试剂可以在提高转染效率的同时降低细胞死亡。常用的物理/机械转染方法包括电穿孔、声孔、基因显微注射和激光照射。DNA转染试剂细胞实验
对细胞周期的影响：在微小RNA-1180转染肾*细胞的实验中，FCM结果显示，转染miR-1180后，位于G0/G1期的细胞比例明显增大，而位于S期和G2/M期的细胞比例明显下降，表明细胞周期被阻滞在G0/G1期1。对转染效率的影响：在脂质体介导RNA干扰质粒转染鸡成骨细胞条件的优化实验中，对转染前细胞融合度、质粒质量与脂质体体积比及转染时间进行优化，在荧光倒置显微镜下观察并计算转染效率。结果表明，在转染前细胞融合达到90％以上，质粒DNA与脂质体比例为1:2.5时转染效率比较高，并且在转染后48h转染效果比较好3。在筛选更优的脂质体转染试剂的实验中，分别用RNAiMax及MessageMax将modGFP转染入MEF细胞，流式分析发现MessageMax的转染效率为（83.33%±3.23%），略高于RNAiMax的（78.77%±6.12%），两者没有统计学差异，但是流式分析和荧光显微镜观察均表明MessageMax转染后1周内的蛋白翻译表达效率更高，是更高效的modRNA转染试剂8。
RNA 转染试剂的效果受到多种因素的影响，包括细胞类型、转染试剂种类、转染条件等。在实际应用中，需要根据具体的实验需求选择合适的转染试剂和优化转染条件，以提高转染效率并减少对细胞的毒性作用。 湖南转染试剂效率高影响物理转染或机械转染效率的因素在很大程度上取决于这些方法的基本原理。
其他转染试剂：机制概述：例如CALNPRNAi转染试剂，其转染机制可能与传统转染试剂不同。该试剂转染效率***高于传统转染试剂，同时毒性比较低。其具体转染机制可能涉及对RNA的摄取、细胞利用率及细胞毒性的综合作用。在不同细胞类型中的表现：目前文献中未明确提及CALNPRNAi转染试剂在特定细胞类型中的具体表现，但研究表明该试剂为难转染细胞的RNA干扰带来了新的选择7。综上所述，不同RNA转染试剂在不同细胞类型中的转染机制存在差异，这些差异主要表现在与RNA的结合方式、进入细胞的途径以及在细胞内的释放和作用方式等方面。了解这些差异对于选择合适的转染试剂进行特定细胞类型的RNA转染实验具有重要意义。
阳离子壳交联的类Knedel纳米粒子作为转染试剂结合机制：阳离子壳交联的类Knedel纳米颗粒（cSCKs）含有不同百分比伯胺和叔胺，通过与siRNA结合来发挥作用18。含100％伯胺的cSCK在HeLa细胞中的沉默效率比较高，能够抑制人血清中siRNA降解以及转染HeLa和小鼠巨噬细胞系。与融合的GALA肽复合可以增强iNOS在较低siRNA浓度下的siRNA沉默，这被证明可以增强摄取后的内体逃逸，进一步说明其结合机制可能涉及与siRNA的紧密结合以及促进细胞内转运。作用特点：cSCK-pa100在HeLa细胞、293T细胞和人支气管上皮（HEK）细胞中显示出比Lipofectamine2000更高的沉默效率，但在人支气管上皮（BEAS-2B）细胞和人乳腺上皮（MCF10a）细胞中可比。在小鼠巨噬细胞系中，cSCK-pa100表现出更大的iNOS沉默，并提供了更好的保护免于血清降解，证明了其作为siRNA转染剂的潜在用途。综上所述，不同类型的阳离子RNA转染试剂在结合RNA分子的机制上存在差异，主要涉及静电相互作用、纳米复合物形成以及与其他分子的协同作用等方面。这些差异导致了它们在转染效率、细胞毒性、对不同细胞类型的适用性等方面的不同特点。小RNA和质粒DNA的共转染可用于评估转染效率。
考虑RNA需求较少的RNA需求可以降低实验成本，同时也可以减少对细胞的潜在毒性。比较不同试剂的RNA用量：不同的转染试剂可能需要不同量的RNA才能达到相同的转染效果。在选择比较好的RNA转染试剂并将其与电穿孔法进行病毒RNA的比较的研究中，某些商业转染试剂在适当优化后，细胞死亡少得多，RNA需求少，转染效率提高3。考虑实验规模：如果实验需要大量转染细胞，那么选择RNA需求较少的试剂可以降低成本。例如，在大规模的细胞培养实验中，选择RNA需求少的转染试剂可以节省成本和资源。四、考虑血清兼容性在有血清的情况下能够递送RNA的转染试剂可以简化实验操作，提高实验的可重复性。血清对转染的影响：一些转染试剂在有血清的情况下可能会降低转染效率，而另一些试剂则可以在血清存在的情况下正常工作。在比较不同商业RNA转染试剂将黄热病病毒（YFV）和丙型肝炎病毒（HCV）RNA复制子递送至Huh7细胞的能力的研究中，讨论了与高效转染相关的因素，以及在存在血清的情况下能够递送RNA的优势3。选择血清兼容的试剂：如果实验需要在有血清的条件下进行，那么选择血清兼容的转染试剂是必要的。例如，在一些细胞培养实验中，血清是细胞生长所必需的。 在转染中，DNA通常通过病毒或非病毒载体(如质粒)转运到宿主细胞中。江西jetPEI 转染试剂
在腺病毒载体或脂质体的全身递送后，转基因表达相对短暂。DNA转染试剂细胞实验
联合使用其他技术优化DNA和RNA转移的转染试剂在肌肉细胞中的应用：在C2C12细胞中，比较了五种商业转染试剂（Lipofectamine®3000、Viafect™、Fugene®HD、C2C12CellAvalanche®和JetOPTIMUS®）的转染效率7。通过优化DNA:转染剂比例和细胞密度，所有试剂都达到了超过60%的转染效率，且对细胞生长和活力的影响有限。然而，在C2C12细胞中优化的用于DNA转移的条件下，这些试剂对siRNA的转移效率较低，并且对原代肌肉细胞的毒性较高。这提示在使用转染试剂时，可以通过联合使用其他技术或优化转染条件，以提高转染效率并降低细胞死亡。例如，可以进一步研究不同试剂之间的联合使用，或者优化转染后的培养条件，以降低细胞毒性。综上所述，在不同细胞模型中提高RNA转染试剂的转染效率同时降低细胞死亡，可以通过选择合适的转染试剂、优化转染条件以及联合使用其他技术等方法来实现。未来的研究可以进一步深入探讨不同细胞模型中比较好的转染策略，以满足不同研究领域的需求。DNA转染试剂细胞实验
