emlikiForestvirus相关细胞：利用基于SemlikiForestvirus的RNA和DNA向量研究非病毒细胞穿透肽递送载体PepFect6与阳离子脂质体Lipofectamine2000的转染效率，并评估它们对病毒复制的影响。结果表明，PepFect6***证明能够将大（13-19kbp）构建体转运穿过细胞膜。但使用PepFect6试剂递送的DNA分子被发现比使用Lipofectamine2000试剂递送的DNA分子晚约。***，虽然PepFect6和Lipofectamine2000试剂都可用于alphavirus研究，但PepFect6更受青睐，因为它不会引起正常细胞表型的变化，也不会影响先前转染细胞中病毒的正常复制***周期12。奶牛子宫内膜原代上皮细胞：应用带有FAM标记的miRNA-185mimics为报告基因，检测两种不同转染试剂（LipofectamineRNAiMAX与Lipofectamine2000）在细胞接种12、18、24h后的转染效率。结果显示，无论使用Lipofectamine2000还是LipofectamineRNAiMAX作为奶牛子宫内膜原代上皮细胞的转染试剂，各组间12h的转染效率均极***高于18、24h，18h的转染效率均极***高于24h；LipofectamineRNAiMAX各时间点的转染效率均极***高于Lipofectamine2000。使用LipofectamineRNAiMAX作为奶牛子宫内膜原代上皮细胞的转染试剂时，12h的荧光强度极***高于18、24h。 脂质复合物(CLNACs)通过网格蛋白参与的内吞作用进入细胞。浙江厦门转染试剂
考虑多因子转染能力如果实验需要同时转染多个RNA分子或进行共转染实验，那么选择具有多因子转染能力的试剂是重要的。共转染效果：一些转染试剂可以有效地实现多个RNA分子的共转染，而另一些试剂可能在共转染方面效果不佳。在脂质体方法用于modRNA转染各种类型细胞的初步研究中，MessageMax能将modGFP高效转染入多种细胞中，并实现modGFP和modmCherry在MEF细胞中的共转及核内因子nGFP和mTBX5在MEF细胞核中的定位5。选择适合多因子转染的试剂：根据实验需求，选择能够满足多因子转染要求的转染试剂。例如，如果实验需要同时转染多个基因或进行基因编辑实验，那么选择具有多因子转染能力的转染试剂可以提高实验效率。江西武汉转染试剂在转染实验中使用对照对于确定所使用的转染试剂和核酸的效果和效率至关重要。
对于容易转染的贴壁细胞如人胚肾细胞（HEK293）和人宫颈*细胞（HeLa），脂质体转染效率相对较高。这些细胞具有较强的内吞能力，能够有效地摄取脂质体-核酸复合物。例如，在标准的转染条件下，HEK293细胞的转染效率可以达到50%-70%。而对于一些难转染的贴壁细胞，如原代肝细胞和某些神经细胞，其转染效率较低。这是因为它们的细胞膜结构比较复杂，可能存在较厚的糖萼或者紧密的细胞间连接，阻碍了脂质体-核酸复合物的进入。例如，原代肝细胞的转染效率可能只有10%-20%。
一般来说，贴壁细胞对脂质体的耐受性相对较好。但是，在高浓度脂质体转染的情况下，即使是耐受性好的细胞也会受到影响。例如，HeLa细胞在高浓度脂质体转染时，可能会出现细胞膜完整性受损，表现为细胞内乳酸脱氢酶（LDH）释放增加，细胞的代谢活动也会受到一定程度的干扰。对于难转染的贴壁细胞，由于其本身比较脆弱，较低浓度的脂质体也可能产生明显的细胞毒性。比如原代神经细胞，脂质体可能会破坏其精细的神经突起结构，影响细胞的正常生理功能。
在核酸递送中的应用核酸***可以通过基因增强、基因抑制和基因组编辑实现持久甚至***的效果。然而，裸核酸分子难以进入细胞，阳离子聚合物作为非病毒核酸递送系统，其分子上带有正电荷基团，可浓缩核酸分子形成纳米颗粒，帮助核酸跨越屏障在细胞中表达蛋白质或抑制目标基因表达。阳离子聚合物易于合成、修饰和结构控制，是一类有前途的核酸递送系统7。在颅内递送合成mRNA中的应用在本研究中，使用常用的转染试剂建立了颅内递送合成mRNA的小鼠模型。将合成的荧光素酶mRNAs用两种不同的转染试剂包裹后定点微注射到大脑中，通过小动物成像系统监测递送的mRNA的表达状态，并通过行为和血液生化测量评估可能的试剂诱导的生物毒性。该模型表明，合成mRNA可以用常用的转染试剂成功递送到大脑中，且没有可测量的毒性，外源性mRNA的表达在颅内注射后在合理的时间内持续存在。合成修饰的TRAILmRNA也被用作***应用的例子9。研究人员集中研究了将合成t细胞免疫原作为DNA疫苗使用的方法。
转染时间：转染时间的长短也会影响转染效率。过长或过短的转染时间都可能导致转染效率降低。在阳离子脂质体Lipofectamine2000对PC12细胞的转染实验中，转染时间为6h时转染效率较高3。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好转染时间为24小时1。细胞接种密度：细胞接种密度也会影响转染效率。过高或过低的细胞接种密度都可能导致转染效率降低。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，2×105接种密度时转染效率比较高9。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，Hela细胞系和Siha细胞系的比较好接种密度分别为1.5×104（每孔24孔板）1。血清的有无：血清的存在可能会影响脂质体转染效率。一些实验表明，血清可能会降低转染效率，而另一些实验则表明血清对转染效率没有影响。在优化宫颈*细胞系转染效率的实验中，与含血清培养基相比，只有Siha细胞在无血清培养基中培养时在转染前获得了更高的转染效率（P＜0.01）1。在脂质体介导法转染肿瘤细胞效率的优化实验中，血清在本实验室条件下并不影响转染效率。基于病毒的转染，或者更具体地称为转导，涉及使用病毒载体将特定的核酸序列带入宿主细胞。DNA转染试剂试用
PHP是由天然来源的羟基脯氨酸(如胶原蛋白、明胶和其他蛋白质)制成的，是一个用作基因载体的聚酯。浙江厦门转染试剂
优化转染条件MOI值对Lentivirus载体转染许旺细胞的影响：以Lentivirus三质粒系统构建病毒载体，在体外对原代大鼠许旺细胞进行转染，研究不同MOI值（***复数）对转染效率的影响32。结果显示，在病毒转染3天后，各不同MOI值的培养孔中开始出现少量荧光反应，第5天时荧光数量明显增多，第7天达到高峰，第9天与第7天变化不明显。从细胞转染效率来看，不同的MOI值效果不同，MOI值为5和10时转染效率较高。这表明在使用Lentivirus载体转染许旺细胞时，优化MOI值可以提高转染效率。同时，未提及该转染过程对细胞死亡的影响，但可以通过进一步的实验，如细胞活性检测等，来确定在提高转染效率的同时对细胞死亡的影响。浙江厦门转染试剂
