RNA转染试剂是一类能够将RNA分子导入细胞内的物质，其作用原理主要涉及以下几个方面。利用电荷相互作用：许多RNA转染试剂是阳离子性的，它们可以与带负电荷的RNA分子通过静电相互作用结合形成复合物。例如，鱼精蛋白是一种天然阳离子肽混合物，由于相反电荷驱动的耦合作用，被用于细胞内核酸的递送8。鱼精蛋白不仅可以保护RNA免受生物系统中的降解，还能增强其对细胞的穿透能力。阳离子脂质体也是常见的转染试剂之一。以LipofectamineTM2000为例，它可以介导携带绿色荧光蛋白基因的真核表达载体转染至鸡成骨细胞9。阳离子脂质体通过其阳离子头部与RNA的负电荷相互作用，形成脂质体-RNA复合物，然后通过与细胞膜的融合或内吞作用将RNA导入细胞内。内吞作用途径：一些RNA转染试剂通过内吞作用进入细胞。如合成的8-mer两亲性反式多聚2'-O-甲基尿苷硫代磷酸三酯RNA元件（2'-OMeUtaPS），它能介导将不带电荷的聚A尾磷酸二酰胺基吗啉代序列（PMO）高效递送至HeLapLuc705细胞或肌管肌肉细胞。已确定大胞饮作用是HeLapLuc705细胞中使用的主要内吞途径。研究已经确定了阳离子脂质体（CLs）的某些特征，这些特征增强了它们在体内转运核酸的能力。青海武汉转染试剂
RNA转染试剂在不同细胞类型中的转染机制存在多种差异。以下将详细阐述不同RNA转染试剂在不同细胞类型中转染机制的差异表现。脂质体转染试剂：机制概述：脂质体转染试剂通常由阳离子脂质和中性脂质组成，其转染机制主要是通过与带负电的RNA分子结合，形成脂质体-RNA复合物。这个复合物能够与细胞膜相互作用，通过内吞作用或膜融合等方式进入细胞。进入细胞后，脂质体-RNA复合物逐渐释放RNA分子，使其能够在细胞内发挥作用。在不同细胞类型中的表现：在肾*细胞系786-O和ACHN中，目前虽未明确提及脂质体转染试剂的作用，但可以推测其可能通过类似的机制进入细胞，影响细胞内的基因表达和细胞生长。例如，微小RNA-1180（miR-1180）转染对肾*细胞生长产生影响，虽然未明确指出转染试剂类型，但脂质体转染试剂可能在类似的研究中发挥作用1。在MEF细胞、3T3细胞、Hela细胞及MCF-7细胞中，MessageMax脂质体转染试剂能将modGFP高效转染入细胞，并实现modGFP和modmCherry在MEF细胞中的共转及核内因子nGFP和mTBX5在MEF细胞核中的定位。这表明脂质体转染试剂在不同类型的细胞中能够有效地将RNA分子转运到细胞内，并实现特定蛋白的表达。体内转染试剂公司随着寡核苷酸生物合成产业的发展，不同类型的修饰寡核苷酸也被引入市场，以提高小RNA寡核苷酸转染的效率。
对基因表达的影响：在微小RNA-1180转染对肾*细胞生长的影响的研究中，肾*细胞分为两组：dsControl组和miR-1180组。实时定量（qRT）-PCR检测p21mRNA的表达变化，结果显示转染miR-1180后，786-O和ACHN细胞中p21mRNA水平分别上调（P〈）和（P〈），p21蛋白表达趋势与qRT-PCR结果相符，CDK4、CDK6和CyclinD1蛋白的表达明显下调。同时，流式细胞术（FCM）检测细胞周期变化显示细胞周期被阻滞在G0/G1期，MTS结果显示细胞活力明显降低，集落形成实验显示细胞增殖能力降低。结论是miR-1180能******肾*细胞中p21蛋白的表达，并抑制肾*细胞786-O和ACHN的生长1。在微小RNA-330-5p过表达对宫颈*细胞C33A中肿瘤坏死因子受体相关因子4（TRAF4）基因表达的抑制作用和对C33A细胞增殖的影响的实验中，通过Lipofectamine2000转染试剂分别向宫颈*细胞系C33A瞬时转染miR-330-5p模拟物（设为实验组）或者转染miR-NC（设为对照组），结果显示与对照组相比，实验组C33A细胞中TRAF4mRNA下降（p＜），TRAF4蛋白下降（p＜）。集落形成实验显示，实验组C33A细胞的增殖能力明显下降（p＜）。结论是miR-330-5p可通过降低宫颈*细胞C33A中TRAF4的表达抑制宫颈*细胞C33A的增殖。
准确控制脂质体与核酸的比例是关键。通过实验确定比较好的脂质体 - 核酸复合物比例，一般可以进行梯度实验，从较低比例开始逐步增加，观察转染效率的变化。例如，不同类型的细胞对脂质体和 RNA 或 DNA 的比例要求不同，像在转染 HEK293 细胞时，可能 1:3（脂质体：核酸）的比例比较合适，而对于较难转染的原代细胞，可能需要适当增加脂质体的用量。
不同配方的脂质体在转染效率上有差异。根据细胞类型和实验目的选择合适的脂质体试剂。例如，一些脂质体含有特殊的功能成分，如靶向基团可以增强与特定细胞的结合，或者具有促进内吞体逃逸的成分，从而提高转染效率。新型的脂质体制剂不断涌现，如含有可电离阳离子脂质的脂质体，在生理 pH 条件下呈电中性，减少与血清蛋白的相互作用，进入酸性的内体后带正电，更有利于与内体膜融合，释放核酸，在提高转染效率的同时降低细胞毒性。 RNA 转染试剂在不同实验环境下表现出不同的效果。
三、脂质体组成对转染效率的影响不同脂质组成的影响：研究发现脂质体的组成对不同类型细胞的转染效率有影响。例如，四种不同的DOTAP与DOPE重量比的脂质体配方对不同细胞系的转染效率不同。Huh7和AGS细胞的比较好脂质体组成是T1P0和T3P1；COS7细胞是T3P1和T1P1；A549细胞是T1P1和T1P36。脂质体结构的影响：脂质体复合物的形状会随着DOPE比例的增加从层状结构变为倒六角形结构，但在所有使用的细胞系中，特定结构在转染效率上没有明确的优势6。四、其他因素的影响血清的影响：对于某些细胞，血清的存在会影响转染效率。如Siha细胞在无血清培养基中培养时转染效率更高，而在Caco-2细胞的转染中，血清在本实验室条件下并不影响转染效率19。细胞传代次数：Caco-2细胞在2-5次细胞传代时转染效率比较高9。综上所述，脂质体转染对不同类型细胞的影响存在多方面的差异，包括转染效率、影响因素以及脂质体组成等。在进行脂质体转染实验时，需要根据不同的细胞类型优化转染条件，以获得比较好的转染效果。纳米颗粒，由于其在DNA转运到细胞中的保护能力，在不久的将来可以用作转基因的非病毒载体。神经细胞转染试剂代做
在聚葡萄糖、精胺(PG)偶联物和第四代聚酰胺树状大分子(PAMAM G4)的帮助下。青海武汉转染试剂
核细胞、关节软骨细胞、间充质干细胞（MSCs）：选择两种合成转染试剂（阳离子脂质商业试剂LipofectamineRNAiMAX和聚乙烯亚胺（PEI））以及两种天然衍生转染试剂（多糖壳聚糖（98%脱乙酰化）和透明质酸（20%酰胺化）），用于将siRNA递送到包括髓核细胞、关节软骨细胞和间充质干细胞在内的原代间充质细胞中。以甘油醛-3-磷酸脱氢酶（***DH）作为内源性模型基因，在转染后第3天和第6天评估由20nM或200nMsiRNA引起的沉默程度。除了沉默效率外，还评估了细胞毒性、DNA含量变化和细胞分化潜能等非特异性影响。在四种转染试剂中，基于商业脂质体的试剂在20nMsiRNA时是**有效的siRNA递送试剂，其次是壳聚糖。使用阳离子脂质体、壳聚糖和PEI转染显示出不同程度的活力和DNA含量下降，这取决于所评估的siRNA剂量和细胞类型，但与***DH敲低无关。一些对DNA含量的影响并不伴随着活力的相应变化。然而，细胞周期抑制或进展的标记基因（如p21和PCNA）的表达变化不能解释DNA含量的变化。有趣的是，发现了***DH活性的非特异性上调，这***于软骨细胞15。肝*细胞HepG2和：比较两种人类细胞模型中两种转染剂，即基于脂质体的Lipofectamine™RNAiMAX和基于聚合物的GenMute™。 青海武汉转染试剂
