免疫组化有哪几种分类 ?
1)按标记物质的种类,如荧光染料、放射性同位素、酶(主要有辣根过氧化物酶和碱性磷酸酶)、铁蛋白、胶体金等,可分为免疫荧光法、放射免疫法、免疫酶标法和免疫金银法等。
2)按染色步骤可分为直接法(又称一步法)和间接法(二步、三步或多步法)。与直接法相比,间接法的灵敏度提高了许多。
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3)按结合方式可分为抗原-抗体结合,如过氧化物酶-抗过氧化物酶(***)法;亲和连接,如卵白素-生物素-过氧化物酶复合物(ABC)法、链霉菌抗生物素蛋白-过氧化物酶连结(SP)法等,其中SP法是比较常用的方法;聚合物链接,如即用型二步法,此方法尤其适合于内源性生物素含量高的组织抗原检测。 大鼠、小鼠组织免疫组化,找英瀚斯生物。浙江动物组织免疫组化实验

免疫组化结果背景染色较深的原因有哪些?
(1)抗体浓度过高:一抗浓度过高是常见的原因之一。解决办法是,每次使用新抗体前应当对其工作浓度进行测试,使每一抗体个体化,找到适合自己实验室的理想工作浓度,既使是即用型的抗体也应如此,不能只简单的按说明书进行染色。
(2)抗体孵育时间过长或温度较高:解决办法是,严格执行操作规程,比较好随身佩带报时表或报时钟,及时提醒,避免因遗忘而造成时间延长。现在流行的二步法(Polymer)敏感性很高,要求一抗孵育的时间不是传统的1小时,而是30分钟,因此,要根据染色结果进行调整。
(3)DAB变质和显色时间太长:DAB比较好现用现配,如有沉渣应进行过滤后再用。配制好的DAB不应存放时间太长,因为在没有酶的情况下,过氧化氢也会游离出氧原子与DAB产生反应而降低DAB的效力,未用完的DAB存放在冰箱里几天后再用这种似乎节约的办法是不可取的。DAB的显色比较好在显微镜下监控,达到理想的染色程度时立即终止反应。但是当染**太多时或用染色机时,这样做似乎不现实,但至少应对一些新的或少用的抗体显色时进行监控,避免显色时间过长。
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细胞爬片免疫组化检测实验步骤
1、选择贴壁良好的细胞爬片,用4%多聚甲醛固定后15min后自然晾干。
2、PBS洗3次,每次5min。3、切片放入3%过氧化氢溶液,室温下孵育10min,以阻断内源性过氧化物酶。
4、PBS洗3次,每次5min,甩干后5%BSA封闭20min(封闭电荷)。
5、去除BSA液,每张切片加入50μl稀释的一抗覆盖组织,4℃过夜。
6、PBS洗3次,每次5min。
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7、去除PBS液,每张切片加50μl-100μl相应种属的二抗,4℃孵育50min。
8、PBS洗3次,每次5min。
9、去除PBS液,每张切片加50-100μl新鲜配制DAB溶液,显微镜控制显色。
10、显色完全后,蒸馏水或自来水冲洗,苏木素复染,1%盐酸酒精分化(1s),自来水冲洗,氨水返蓝,流水冲洗。
11、切片经过梯度酒精(70-100%)10min一个梯度,脱水干燥,二甲苯透明,中性树胶封固。
临床应用中,药物靶点免疫组化,英瀚斯生物专业做实验外包服务,一站式医学科研平台。免疫组化及分子病理学方法在疾病诊断中只只起辅助医疗的作用,而药物病理学是用病理学的方法确定药物医疗的靶点、评价药物医疗的疗效、预测药物医疗的反应,因此药物靶点免疫组化属“单独的诊断”。因此对于对照的设置、质量的控制均需要更高的要求,如对试剂的要求,不同于一般的诊断试剂,应按对药物管理的要求操作。HER2蛋白着色3+者可作为临床医生建议患者接受曲妥珠单抗等药物医疗的依据。免疫组化如何得到好的效果?

实验失败常见问题分析有哪些:
为什么在显微镜下观察发现所有的切片都成阴性?
答:这种现象主要是由操作不当导致,可能的原因有:1.染色操作不当,致使染色失败;2.漏加一种抗体或者制备出的抗体没有活性;3.缓冲液中有叠氮化钠,抑制了酶的活性;4.复染或脱水剂使用不当等。建议逐一排查,找到原因后重新进行实验。
在显微镜下观察发现所有的切片都成阳性,这是为什么?答:与上一个问题类似,出现的原因也是试验操作存在问题,可能的原因有:1.切片在染色过程中抗体过浓,或者干片了;使用的呈色底物溶液已变色或呈色反应时间过长;3.抗体温育的时间过长等。
在显微镜下观察发现切片的背景很深,这是为什么?答:以下几方面会导致切片的背景过深:1.蛋白质封闭不够或所用血清溶血,造成抗体的非特异性反应;2.内源性过氧化酶没有完全阻断,显色过程中过氧化酶与酶底物反应,造成背景;3.底物呈色反应时间过长或呈色反应后漂洗不彻底。 免疫组化流程是什么样的?河北切片免疫组化实验
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