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外泌体的提取主要包括以下几种方式。一是超速离心法，这是目前外泌体提取较常用的方法。此种方法得到的外泌体量多，但是纯度不足，电镜鉴定时发现外泌体聚集成块，由于微泡和外泌体没有非常统一的鉴定标准，也有一些研究认为此种方法得到的是微泡不是外泌体。二是过滤离心，这种操作简单、省时，不影响外泌体的生物活性，但同样存在纯度不足的问题。三是密度梯度离心法，用此种方法分离到的外泌体纯度高，但是前期准备工作繁杂，耗时，量少。外泌体检测作为一种新型的液体活检热点技术已被许多临床科研机构普遍地应用于一些病症和疾病的无创诊断。外泌体的提取、分离方法：开发高效、快速、稳定，并且保持外泌体结构和生物功能完整性的方法。唐山正规外泌体提取试剂厂家现货

外泌体的提取、分离方法：开发高效、快速、稳定，并且保持外泌体结构和生物功能完整性的方法，是目前外泌体应用于临床的基础和前提。从细胞上清和体液中提取分离外泌体的方法很多，但是外泌体的纯度和产量却和分离方法息息相关。通常分离步骤少、产率高，但是纯度会受到影响。鉴于每种分离方法都有其优缺点，实验可以根据样本来源、下游实验目的等，选择合适的外泌体分离方法。2015年，国际囊泡组织(InternationSocietyforExtracelluarVesicles,ISEV)指出，简单依靠一种分离方法得到的外泌体的纯度和产量都难满足实验的需求。因此，推荐联合使用各种方法，从而得到高纯度和高产量的外泌体。南昌正规外泌体提取试剂直销厂家外泌体的提取、分离方法：尺寸排阻色谱法和超滤法。

1983年，外泌体初次于绵羊网织红细胞中被发现，1987年Johnstone将其命名为“exosome”。多种细胞在正常及病理状态下均可分泌外泌体。其主要来源于细胞内溶酶体微粒内陷形成的多囊泡体，经多囊泡体外膜与细胞膜融合后释放到胞外基质中。所有培养的细胞类型均可分泌外泌体，且外泌体天然存在于体液中，包括血液、唾液、尿液、脑脊液和乳汁中。有关他们分泌和摄取及其组成、“运载物”和相应功能的精确分子机制刚刚开始研究。外泌体目前被视为特异性分泌的膜泡，参与细胞间通讯，对外泌体的研究兴趣日益增长，无论是研究其功能还是了解如何将其用于微创诊断的开发。如何高效地提取外泌体是实现这项新兴液体活检技术临床常规化应用的关键。

1996年，研究者发现外泌体作为抗原呈递因子参与T细胞依赖的抗一些病症反应，开启了外泌体蛋白研究的新天地。2013年诺贝尔生物/医学奖解答了细胞如何组织其内部较重要的运输系统之一——囊泡传输系统的奥秘。外泌体（Exosome）是细胞主动分泌的囊泡样小体，大小均一，直径30-200nm，密度1.10-1.18g/ml，来源普遍，几乎所有细胞都可分泌，在血液，尿液，唾液，脑脊液，腹水，乳汁等体液中普遍分布。外泌体较早在1986年发现于培养的绵羊红细胞上清液中。外泌体是一种能被机体内大多数细胞分泌的直径大约为30~150nm的具有脂质双层膜的微小膜泡。

外泌体的提取方法学规范、统一定量及鉴定等。关于外泌体的提取有超速离心、试剂盒、超滤法、蔗糖密度梯度离心等，然而各种方法均有其利弊。超速离心法是目前外泌体相关文章中的主流方法，由于离心步骤繁琐，费事费力，而且步骤多导致实验中容易污染，且损耗量大，使得较终回收的外泌体不稳定。而且对于抽提细胞上清来说，更是极为不请便，试想用提取300ml的上清需要6个50ml离心管，无论是过滤还是后续的每一步的离心去沉淀，都具有操作极其不便的缺点，总之非常麻烦。而超滤法存在外泌体会堵塞膜孔，造成浓缩效率低，浓缩管重复利用差，甚至堵塞在膜孔的外泌体还可能会粘连成团，造成损失及较后的数据有误差，对于后续实验也有影响。外泌体的提取方法：多聚物沉淀法。南京正规外泌体提取试剂厂家供应

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用于外泌体提取的体液收集注意事项：1、抽血技巧。操作要轻柔迅速。试管可翻转8-10次使样本与抗凝剂混匀，避免剧烈摇晃。混匀后，将试管固定垂直放置于离心分离器，在顶部记录抽血的准确时间，因为抽血与离心之间的时间间隔可能是一个影响因素。外泌体在抽血后30分钟内是比较稳定的，若时间过长将导致外泌体数量增加。血小板极易因抽血时的物理因素而并释放出外泌体，其中包括接触、压力、切力。2、抽血时间。除了血液黏度，体内血液的各项指标在1天中变化很大。生理节律会对血小板的产生很大的影响。白细胞的募集和循环系统中促炎细胞和细胞会随时间变化。大量的具有特殊表面分子的微粒也被证明会随时间变化。目前尚无设计较好的实验对证实不同时间血液中外泌体的变化，故应在相同的时间采集样本。目前饮食是否会对EV产生影响尚未可知，但是由于脂蛋白可运载RNA且食物的摄取可以影响循环脂蛋白颗粒的类型、数量和作用，故抽血可在较后一次用餐后一段确定的时间进行。唐山正规外泌体提取试剂厂家现货