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外泌体的提取、分离方法：尺寸排阻色谱法和超滤法；尺寸排阻色谱法是利用分子筛理论，较初是根据蛋白质分子大小分离蛋白质的色谱技术。该方法的主要优点是不需要很大的离心力，从而保证了外泌体的完整性。Mol等[13]对比超高速离心和尺寸排阻色谱法得到的外泌体蛋白，结果显示，后者得到的外泌体的蛋白丰度高于前者。这些基于过滤或尺寸排阻色谱的新方法为外泌体大规模的生产和临床应用提供了可能。超滤也是根据外泌体的尺寸将其分离出来的一种方法，超滤一般被认为是外泌体分离过程中的一个准备过程，通过超滤除去大分子和小分子的蛋白质。不过连续的超滤可以分离出外泌体，和超高速离心相比，超滤不需要特殊的设备就可以较短时间内分离出外泌体。但是，超滤膜对外泌体的黏附作用会降低外泌体的产量，并且超滤过程中施加的外力可能会使外泌体变形或者破裂。超滤离心法简单高效，且不影响外泌体的生物活性，是提取细胞外泌体的一种新方法。广州正规外泌体提取试剂供应商

外泌体的提取、分离方法：超高速离心法。常用的是超高速离心法，该方法是被誉为分离外泌体的“金标准”。该方法利用离心力从细胞培养液或生物流体获得外泌体，经过400×g、2000×g、10000×g的低速离心，除去细胞及大的细胞分泌物；较后超高速100000×g离心得到外泌体[12]。超高速离心因操作简单，不需要复杂的技术支持，并且成本相对较低而被普遍使用。但是该方法耗时、产率低，得到的外泌体的数量和质量很大程度上受转子的类型、转子沉降角度等因素影响，其中较主要的问题就是差速离心法获得的沉淀物是外泌体，但也会有其他的囊泡、蛋白质或蛋白和RNA的聚集体。天津外泌体提取试剂推荐厂家它普遍存在并分布于各种体液中，携带和传递重要的信号分子。

外泌体的提取分离：1、超速离心法（差速离心）。超离法是常用的外泌体纯化手段，采用低速离心、高速离心交替进行（如图所示），可分离到大小相近的囊泡颗粒。超离法因操作简单，获得的囊泡数量较多而广受欢迎，但过程比较费时，且回收率不稳定（可能与转子类型有关），纯度也受到质疑；此外，重复离心操作还有可能对囊泡造成损害，从而降低其质量。2、密度梯度离心。在超速离心力作用下，使蔗糖溶液形成从低到高连续分布的密度阶层，是一种区带分离法。通过密度梯度离心，样品中的外泌体将在1.13-1.19g/ml的密度范围富集。此法获得的外泌体纯度较高，但步骤繁琐，耗时。

外泌体的提取、分离方法：微流控技术。微流控是利用微纳米级尺寸的管道来处理和操控流体所涉及的一门技术，其在外泌体分离方面的应用受到越来越多学者的关注。Jie等[16]课题组开发了一种三维纳米结构微流控芯片，微柱阵列通过化学沉积将交叉多壁碳纳米管功能化，然后其就可以识别特定的分子(CD63)并利用独特拓扑纳米材料高效的捕获外泌体。Wunsch等[17]利用硅工艺生产纳米级确定性侧向位移(Nano-DLD)芯片，得到了均匀的间隙尺寸，该芯片可以灵敏地将20~110nm的颗粒分离。该研究证明了外泌体基于大小的位移，从而揭示了利用芯片分选和量化纳米级生物胶体的潜力。外泌体提纯试剂盒的特色与优势：外泌体被纯化并且不含任何其他RNA结合蛋白。

外泌体的提取方法学规范、统一定量及鉴定等。关于外泌体的提取有超速离心、试剂盒、超滤法、蔗糖密度梯度离心等，然而各种方法均有其利弊。超速离心法是目前外泌体相关文章中的主流方法，由于离心步骤繁琐，费事费力，而且步骤多导致实验中容易污染，且损耗量大，使得较终回收的外泌体不稳定。而且对于抽提细胞上清来说，更是极为不请便，试想用提取300ml的上清需要6个50ml离心管，无论是过滤还是后续的每一步的离心去沉淀，都具有操作极其不便的缺点，总之非常麻烦。而超滤法存在外泌体会堵塞膜孔，造成浓缩效率低，浓缩管重复利用差，甚至堵塞在膜孔的外泌体还可能会粘连成团，造成损失及较后的数据有误差，对于后续实验也有影响。来源于细胞内溶酶体微粒内陷形成的多囊泡体，经多囊泡体外膜与细胞膜融合后释放到胞外基质中。长沙外泌体提取试剂厂家直销

外泌体表面有其特异性标记物，用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合。广州正规外泌体提取试剂供应商

外泌体的提取、分离方法：免疫亲和层析法。免疫亲和层析法是利用生物体内存在的抗原、抗体之间高度特异性的亲和力进行分离的方法，主要用于生物大分子的分离、纯化。将其应用于外泌体的分离主要是借助外泌体表面的特异性抗体，如TSG101或四跨膜蛋白。此方法的原理是利用抗原抗体的特异性结合，只有囊泡表面有特异性的抗体才可以被识别，这使得提取的外泌体纯度高，但是产量低。Zarovni等分别用超速离心、密度梯度离心和免疫层析法，从血浆和细胞上清中提取外泌体蛋白，结果表明，免疫亲和层析法得到的外泌体表面存在多种标记蛋白(Alix、CD9、CD63)，同时，ELISA和PCR结果也证明了该方法的可行性。广州正规外泌体提取试剂供应商