PAS染色的临床意义:1.红细胞系统:①红血病或红白血病时幼红细胞可呈阳性反应,有时阳性反应幼红细胞的百分比增高,阳性反应的程度也很强。有时红细胞也呈阳性反应。②缺铁性贫血、珠蛋白生成障碍性贫血(又称地中海贫血)以及骨髓增生异常综合征时幼红细胞可呈阳性反应,有时阳性反应幼红细胞的百分比也较高。有时红细胞也可呈阳性反应。③巨幼细胞性贫血、溶血性贫血、再生障碍性贫血和白血病等疾病时,幼红细胞为阴性反应,有时*个别幼红细胞呈阳性反应。0.5%过碘酸水溶液5分钟。或1%过碘酸95%酒精溶液。江苏如何使用糖原染色试剂盒厂家现货
糖原染色(PAS):(1)原理:过碘酸将血细胞内的糖原氧化,生成醛基。醛基与雪夫液中的无色品红结合,形成紫色化合物,定位于细胞质中。(2)操作方法:干燥涂片,滴加甲醛固定液固定10分钟,流水冲洗,晾干。滴加过碘酸溶液作用20分钟,流水冲洗,晾干。滴加雪夫液作用60分钟,流水冲洗,晾干。滴加甲基绿溶液复染10分钟,流水冲洗,晾干镜检。(4)临床意义:根据染色阳性程度和阳性物形态鉴别主要用于急性淋巴细胞白血病和急性非淋巴细胞白血病鉴别,还有助于红白血病与巨幼细胞贫血和溶血性贫血的鉴别诊断。山东咨询糖原染色试剂盒推荐厂家可将胰酶消化后细胞的保存在含2%BSA的PBS中,防止进一步的损伤。
糖原pas染色液配制及使用方法:1、常规固定,常采用 10%的福尔马林,常规脱水包埋。 2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水;冰冻切片直接入蒸馏水。 3、自来水冲洗 2~3min,再用蒸馏水浸洗 2 次。 4、入过碘酸溶液,室温放置,一般不宜超过 10min。 5、自来水冲洗 1 次,再用蒸馏水浸洗 2 次。 6、入 Schiff Reagent,置于室温阴暗处浸染。 7、自来水冲洗 10min。 8、入苏木素染色液,染细胞核。 9、酸性乙醇分化液分化。 _x000c_10、自来水冲洗 10~15min,更换蒸馏水清洗,使其返蓝。 11、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明,中性树胶封固。
糖原及粘液染色法注意事项:1、 糖原的固定要及时,而且标本要新鲜。2、如用无水酒精作糖原的固定剂,有它的弊病,因无水酒精渗透较慢,而且容易产生极化,(极化是糖原颗粒趋向于细胞的一端)。故用Gendre氏固定液效果较佳,其配法如下:苦味酸饱和于95%酒精85ml40%甲醛 10ml冰醋酸 5ml3、各种试剂必须化学纯,亚硫酸钠须有浓厚气味,器皿必须洁净而干燥,染色缸亦是。4、如果Schiff氏试剂,在经过活性碳吸附漂白后不显无色,首先应考虑试剂中的偏重亚硫酸钠是否失效。如果偏重亚硫酸钠气味不浓,使用时可考虑适当的增加用量。其次考虑碱性品红本身,常常虽属同一生产厂家,但不同批号,其效果就可能不同,应特别引起注意。糖尿病性肾小球硬化症或血管病的诊断。
糖类染色实验——糖原染色:高碘酸氧化液:高碘酸 0.5 g,蒸馏水 100 ml。此液溶解后放入冰箱中待用。Schiff 染色液:碱性复红 1 g,1mol/L 盐酸 20 ml,焦亚硫酸钠(偏重亚硫酸钠)2 g,双重蒸馏水 200 ml。先将 200 ml 双重蒸馏水煮沸,稍有火焰,加入 1 g 碱性复红,再煮沸 1 min,冷却至 50℃ 加入 20 ml1mol/L 盐酸,待 35℃ 时加入 2 g 焦亚硫酸钠。室温中 2 h 之后见稍带红色,5 h 之后变为无色液体。棕色瓶内装好,放入冰箱中保存待用。1. 石蜡组织切片,常规脱蜡至水。2. 蒸馏水洗 2 次。3. 高碘酸氧化液处理 10~20 min。4. 充分蒸馏水洗。5. Shciff 液染色,染色 10~20 min(如果室温在 15℃ 以下时,可在湿盒内加入温水而加快反应)。6. 流水冲洗 3 min(对于着色较深的切片可适当缩短时间)。7. 用 Mayer 明矾-苏木**染细胞核 3~5 min。8. 0.5% 盐酸乙醇液分化 30s,自来水浸洗 2 min。应该尽可能割取生活着的组织块,并随即投入固定液。山东如何使用糖原染色试剂盒产品介绍
过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低,不宜过染。江苏如何使用糖原染色试剂盒厂家现货
糖原染色的原理与操作方法是什么:(1)原理:过碘酸将血细胞内的糖原氧化,生成醛基。醛基与雪夫液中的无色品红结合,形成紫色化合物,定位于细胞质中。(2)操作方法:干燥涂片,滴加甲醛固定液固定10分钟,流水冲洗,晾干。滴加过碘酸溶液作用20分钟,流水冲洗,晾干。滴加雪夫液作用60分钟,流水冲洗,晾干。滴加甲基绿溶液复染10分钟,流水冲洗,晾干镜检。细胞的组织化学方法,是研究细胞成分常用的方法之一。它是利用化学试剂与细胞内的某些物质进行化学反应,从而在细胞局部形成有色沉淀物,再通过显微镜对组织内的生物化学成分进行定性、定位、定量研究。江苏如何使用糖原染色试剂盒厂家现货
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注意事项:染色前:①切出的石蜡切片要好,不能有皱褶或者刀痕,切片不能太厚。②捞片时,较好一张玻片捞一个组织,组织较好位于玻片的中间,美观的同时也利于脱蜡(有时二甲苯的液面低于组织片的时候,达不到脱蜡的目的)。③石蜡切片脱蜡到水时,一定要注意组织切片脱蜡务必要彻底(脱蜡时间不能太少)以使脱蜡后的组织达到真正的“干净”。否则剩余的未脱干净的石蜡粘附在组织表面,在染色时染色液未能充分与组织接触,较终导致染色效果不佳,甚至染不上颜色。④在染色过程中较好不要在玻片上贴标签纸,以避免脱蜡时把标签纸也浸没,致使标签纸上的胶黏到玻片上,造成染色不佳。取材必须新鲜,这一点对于从事细胞生物学研究尤为重要。浙江糖原...