评估疫苗免疫效果或康复者血清中和能力的关键是病毒中和抗体检测。传统的空斑减少中和试验(PRNT)耗时费力。基于假病毒系统的均相发光中和试验已成为高通量替代方案。将表达荧光素酶的报告基因包装进假病毒颗粒(携带目标病毒的囊膜蛋白)。当假病毒炎症细胞时,会驱动荧光素酶表达。如果样本中存在中和抗体,则会阻断炎症,导致荧光素酶信号下降。检测时只需在炎症后裂解细胞并加入发光底物,即可实现快速、定量、高通量的中和抗体滴度测定,在COVID-19等疫病中发挥了重要作用。均相化学发光技术在临床检验中的普及程度。北京均相发光免疫诊断试剂
尽管优势明显,均相发光技术也存在一些挑战和局限性。首先,某些技术(如FRET)可能受到样本自身颜色(如血红蛋白)、浊度或某些化合物(如具有强荧光或淬灭特性的药物)的光学干扰。其次,均相检测通常对试剂的特异性和纯度要求极高,任何非特异性结合或聚集都可能导致假阳性信号。第三,开发均相检测方法需要进行复杂的探针设计和标记优化,前期开发成本较高。比较后,对于某些极低丰度的靶标,其灵敏度有时可能仍低于经过多步洗涤和信号放大的异相方法(如化学发光免疫分析CLIA)。江西体外诊断均相发光厂家有哪些均相化学发光的反应机制是怎样的,有哪些关键步骤?
外泌体等细胞外囊泡(EVs)是疾病诊断的潜在生物标志物来源。其分离和表征通常繁琐。均相化学发光技术提供了快速分析方案。利用EVs表面普遍或特异性表达的膜蛋白(如CD9、CD63、CD81或相关抗原),将针对不同蛋白的抗体分别偶联Alpha供体珠和受体珠。当EVs存在时,多个抗体结合到同一个EV上,拉近微珠产光信号,从而实现EVs的定量。通过使用不同抗体组合,还可以对EVs进行亚群分型分析。这种方法无需超速离心,操作简单,有望用于临床样本的快速筛查。
从原理上深度对比均相与异相免疫分析,能清晰揭示均相技术的革新之处。异相分析法,以经典的酶联免疫吸附试验(ELISA)为表示,其检测依赖于将捕获抗体固定在固相载体(如微孔板)上,通过反复洗涤来分离“特异性结合”与“游离”的标记物,比较终通过底物显色或发光来定量。这个过程繁琐、耗时,且洗涤步骤容易导致结合物损失。而均相免疫分析则让所有反应组分在溶液存。通过物理化学手段,使得只有当目标分子正确结合,形成特定复合物时,才能产生或改变发光信号。例如,在临近诱导技术中,只有两个标记有供体和受体的抗体同时结合一个抗原分子并彼此靠近时,能量转移才能发生,从而报告阳性信号。所有未结合的标记物因其距离远,不产生有效信号,故无需分离。
均相化学发光在个性化医疗中的应用潜力有多大?
均相化学发光技术的实现,主要依赖于两种设计哲学。第一种是直接能量转移路径,表示技术为AlphaLISA/AlphaScreen。其关键是使用能产生单线态氧的供体微珠和含有化学发光剂的受体微珠。只有当生物识别事件将两者拉近至200纳米以内时,供体产生的单线态氧才能有效触发受体珠内的化学发光反应。未结合的微珠因距离过远,单线态氧在扩散途中淬灭,不产生信号。第二种是活性调控路径,即生物识别事件直接调控化学发光反应的效率或速率。例如,将化学发光反应的催化剂(如酶)或其抑制剂/共反应物与生物分子偶联,当目标分子存在导致它们接近或分离时,化学发光信号被开启或关闭。这两种路径均巧妙地利用“临近”或“调控”将特异性识别与信号产生直接耦合。均相化学发光的检测速度如何,能否满足快速诊断需求?北京诊断试剂均相发光厂家有哪些
均相化学发光在疾病早期筛查中能发挥怎样的作用?北京均相发光免疫诊断试剂
GPCR是比较大的药物靶点家族,其功能研究涉及配体结合、第二信使产生、下游信号通路活化等多个层面。均相发光技术多方面渗透于此领域。对于配体结合竞争实验,可采用TR-FRET,将受体标记供体,配体标记受体。对于GPCR活化后比较关键的cAMP积累或IP3/DAG产生,均有成熟的均相检测试剂盒。例如,cAMP检测常采用基于抗体竞争原理的均相发光免疫分析。细胞裂解后,内源性cAMP与加入的标记cAMP竞争结合有限量的抗cAMP抗体。抗体结合事件通过FRET或Alpha技术被检测,信号强度与内源性cAMP浓度成反比。这类方法直接在细胞裂解液中进行,快速、灵敏,完美契合GPCR激动剂/拮抗剂的高通量筛选。北京均相发光免疫诊断试剂
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