大鼠的抓取固定大鼠的抓取斯基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指，抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。也可伸开左手之虎口，敏捷地从后，一把抓住。若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活缚腿，背卧位绑在大鼠固定板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒即可）。注意事项：为了减少或避免大鼠在实验中发生的应激反应，以减少对实验者的攻击损伤，这里介绍几种抓取大鼠的技巧改进：（1）在抓取前可用一条清洁的毛巾蒙住大鼠全身，大鼠处于黑暗状态下神经会有所放松，看不到实验者的动作也会降低对实验者的攻击机会；（2）一般抓取大鼠都会抓住尾巴，但是有时大鼠尾巴不在身后而在其面前，这时实验者可能在抓取鼠尾的时候被大鼠攻击。这种情况一般可以轻推其腰臀部，使之变换姿势，待鼠尾调整到身后再进行抓取；（3）由于大鼠尾部被抓起时，会应激性地排便、排尿，所以比较好在粗糙表面上垫上报纸等，做好防范措施，减轻工作量。卡文斯实验鼠的标准化饲养环境减少实验变量干扰。高血压大鼠多少钱一只
品系名称:db/db(I型糖尿病小鼠)品系编号:C000110品系背景:C57BLKS(BKS)品系描述:db基因为4号染色体隐性突变基因，能导致肥胖伴糖尿病，纯合子有过***症:其瘦素受体基因失去功能，纯合的糖尿病自发突变小凰在出生后2周内就发生高胰岛素血症，血浆胰岛素开始升高，在3-4周龄时产生可以辨认的肥胖表型，4-8周血糖升高，同时胰岛素分泌增加至正常值的数倍，但组织中的胰岛素受体明显少于正常，并且受体的结合力也低于正常，8周后就发展为非常严重的过***症，期间伴有胰岛案抵抗，B细胞功能衰竭，一般在8~10个月内死亡，临床症状和病程比ob/ob更严重，寿命更短;纯合小鼠多食、多饮、多尿，且纯合db/db小不育。应用领域:宽泛地应用于糖尿病、肥胖症、伤口***完成延迟、丘脑/垂体后叶缺陷、胰脏损伤、生育障碍及免疫和炎症研究。帕金森疾病小鼠饲养管理常州卡文斯实验鼠以专业、高效的服务支持全球生命科学研究。
品系名称:SHRRat***大鼠品系对照:WKY品系类别:近交系品系毛色:白化产品状态:***品系描述:来源:1961年左右，日本京都大学(KyotoUniversity)医学院Okamoto(Koz00kamoto)实验室在Wistar大鼠中将具有自发性***(尾静脉压即收缩压150~175mmHg)的雄性Wistar大鼠(7周龄)与血压稍高于平均水平的(收缩压140~150mmHg)雌性Wistar大鼠交配，从所得的F1***始进行近交筛选。在近交筛选过程中观察到，随着代数增加，自发性***发生率逐渐增大而发生的时间(年龄)越来越早，严重***(高于200mmHg)的大鼠发生率也越来越高。**终形成了所有雄性和雌性自发***发生率100%的近交系SHR,应用领域:遗传性***模型、***药物研究、多动症(ADHD)模型。
实验鼠是生物医学研究中较为广阔使用的模式生物，其在遗传学、药理学、疾病模型构建等方面发挥着不可替代的作用。目前，实验鼠模型的开发已经进入精细化和个性化时代，通过基因编辑技术如CRISPR/Cas9，科学家能够精确地模拟人类疾病，极大提高了研究的准确性和转化医学的可行性。同时，实验动物福利标准的提高，促使实验鼠饲养环境和实验方法更加人性化和科学化。未来实验鼠研究将更加侧重于多基因编辑技术的整合应用，以构建复杂疾病模型，满足精细医疗和个性化诊治成功完成研究的需求。卡文斯实验鼠在免疫缺陷模型应用中广受科研机构好评。
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。常州卡文斯实验鼠运输全程温控，保障动物健康状态。Rag2小鼠技术指导
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实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。高血压大鼠多少钱一只
