品系名称:A53T(帕金森疾病)品系编号:D000053品系背景:C57BL/6J统神经突触末端的可溶性蛋白，是Lewy小体的重要组成部分。研究发现在家族遗传性帕金森病中存在有3种突变(A53T,A30P和E46K)和其野生型二倍体的表达，SNCA点突变或者二倍体都会导致a-synuclein蛋白聚集成Lewy小体，阻碍了多巴胺的代谢和神经元的正常功能，导致神经元的死亡。Prnp-SNCA*A53T转基因小鼠在朊蛋白启动子的指导下表达突变的人A53Ta-突触**白。纯合子转基因小鼠是可存活、有生育能力且大小正常的。在8月龄大时，一些纯合子小鼠出现了逐渐严重的运动表型，表现为体重减轻、颤抖、无法直立、肢体部分瘫痪和行动不便等对8~12月龄小鼠进行免疫组化分析,发现a-5yn包涵体在脊髓、脑干、小脑和丘脑中密集堆积，且这些包涵体的结构、位置和发病特征类似于人类家族性帕金森病。除此之外,小鼠从6月龄时就表现出气味辨别和嗅觉受损。攻击性是可以观察到的，尤其是在雄鼠中。杂合子小鼠同样表现出相似的表型特征，但发病时间较晚，在22~28月龄之间。另外同样可以观察到攻击性行为。纯合小鼠经常发生非生产**配(nonproductivematings)。应用领域:a-Synuclein的聚集研究以及家族性帕金森病研究。卡文斯实验鼠在心血管疾病研究领域具有优异建模能力。小鼠常见问题
小鼠的生殖生理特性：小鼠性成熟早，一般36-42日龄即性成熟。一般雌鼠交配后10-12小时，在阴道口可见1个白色、绿豆大小的阴道栓，防止精子倒流，以提高受孕率，可以作为交配的标志。小鼠性周期为4-5天，一个性周期可以分为4个阶段。发情后2-3小时可排卵，根据品系不同一次可排10-23个卵子。繁殖能力强，全年均可繁育。有产后发情的特点，在分娩后24小时内排卵，此时交配即可受孕，俗称“血配”。如何根据外观判断小鼠健康状况：食欲旺盛，眼睛有神，反应敏捷，体毛光滑，肌肉丰满，活动有力，身无伤痕，尾不弯曲，天然孔腔无分泌物，无畸形，粪便黑色呈麦粒状。ob/ob鼠长期睡眠剥夺的实验小鼠，其记忆力测试成绩较正常睡眠组明显降低。
腹腔注射腹腔注射虽然简单，也有翻车的危险。一针下去，扎到内脏，呜呼哀哉。先将小鼠腹腔注射操作要点总结如下：抓鼠后选择低尾高位的位置；选择下腹部腹中线进针；小于60度进针有落空感；回抽未见血后推针，旋转半圈拔针。腹腔注射适合刺激性小的水溶性药物的用药，利用腹腔膜及大小网膜血管丰富，吸收面积大等特点，使药物快速入血。注意事项：1、腹腔注射只宜用等渗药液（如5％葡萄糖液、0.9％生理盐水）适当配无刺激性的药物（如肌苷、维生素B1、维生素C），而且注射量不宜太大，注射药液温度应与体温相近。2、注射时，小鼠头部要呈低位，使内脏向胸部侧偏移，针头不宜过长，以防止刺伤肠道、膀胱或其它内脏身体部位。3、进针时不要犹豫，切勿为避免刺伤身体部位，针头刚插入皮肤就向上挑起，此时针头极有可能还没刺破腹腔壁，只是将液体注射在腹部皮下。
ICR小鼠主要用途：已选为某些生物制品检定的法规动物。广阔用于药理、毒理、**、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教学。中国科学院遗传研究所在1973年从日本国立**研究所引进；1979中国医学科学院分院动物中心引进；1978年北京检定所引进；1983年上海计划生育研究所从瑞士苏黎世毒理学研究所引进。特点：远交系小鼠，毛色白化。适应性强，体格健壮，繁殖力强，生长速度快，实验重复性较好，雌鼠自发性畸胎瘤和管状腺瘤发病率为0%~1%，用氨基甲酸乙酯诱发时，11~16天胚胎期畸胎瘤和管状腺瘤发病率为5.9%，离乳个体管状腺瘤和囊瘤发生率为30%,孕鼠为3%。是国际通用的封闭群小鼠,我国从美国、日本、英国、瑞士等国引进的ICR，各群体之间在遗传特性方面不可避免地出现了一些差异，在应用时应注意。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选，复制病理模型较常用的实验动物。外周血象和骨髓细胞，具有较好的稳定性，是良好的血液学实验用动物。常州卡文斯严格执行实验动物伦理审查，确保科研合规性。
设施环境不达标会给小鼠带来的影响有哪些？小鼠本身特性性情温顺，容易捕捉，胆小怕惊，不主动咬人。但性成熟的非同窝雄性易相互打斗并咬伤背部、尾部、生殖器等。但是1、若温度过高（超过30℃）会造成♂：睾丸萎缩或形成精子的能力下降；♀：性周期紊乱，泌乳能力下降或拒乳。日温差不能过大（≤3℃），因为对于裸鼠，不能有效的保持体温。2、湿度过大，会造成微生物易于繁殖，饲料、垫料易霉变，动物易患呼吸系统疾病；小仔发育不良，哺乳雌鼠吃仔。3、噪声超标可引起动物紧张、流产、产仔率下降和吃仔等现象。卡文斯实验鼠的标准化饲养环境减少实验变量干扰。ob/ob小鼠技术指导
常州卡文斯专业团队为实验鼠提供全程技术支持和售后保障。小鼠常见问题
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。小鼠常见问题
