小鼠的抓取固定1.小鼠的抓取（1）右手提起小鼠尾巴，将其放在鼠笼盖或其他粗糙表面上（2）小鼠向前挣扎爬行时，再用左手拇指和食指抓住鼠耳和颈部皮肤抓取固定时需注意:过分用力,会使动物窒息或颈椎脱臼;用力过小,动物头部能反转来咬伤实验者的手。因此实验者必须反复练习,熟练掌握。2.小鼠的固定（1）徒手固定用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台向后拉，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。固定板固定鼠麻醉后置小鼠固定板上，取仰卧位，用胶布缠粘四肢，再用针透过胶布扎在板上，从而将小鼠固定在小鼠固定板上。（3）固定架固定让小鼠直接钻入固定架里,封好固定架的封口,露出尾巴。此装置特别适用于小鼠尾静脉注射等。常州卡文斯实验鼠的繁殖性能稳定，满足大规模实验需求。OT1小鼠技术指导
品系名称:APP/PS1(阿尔兹海默症)品系编号:C000111品系背景:C57BL/6J品系描述:APP/PS1是表达嵌合小鼠/人淀粉样蛋白前体蛋白(MO/HUAPP695-5we)和突变的人早老素1(P51-DE9)的双转基因小鼠，均定向于***系统系统神经元。这两种突变都与早发性阿尔茨海默病有关。转基因小鼠在6到7个月大时在大脑中形成B-淀粉样蛋白沉积。6到15个月大的小鼠在B-淀粉样蛋白负荷方面表现出性别差异。同时转基因小鼠伴随一定癫痫发病率，随着小的年龄增加，发病率逐渐升高。应用领域:应用于神经退行性疾病、老年痴呆症等方面的研究。II型糖尿病小鼠技术推广卡文斯实验鼠在心血管疾病研究领域具有优异建模能力。
ICR小鼠主要用途：已选为某些生物制品检定的法规动物。广阔用于药理、毒理、**、放射性、食品、生物制品等的科研、生产和教学。中国科学院遗传研究所在1973年从日本国立**研究所引进；1979中国医学科学院分院动物中心引进；1978年北京检定所引进；1983年上海计划生育研究所从瑞士苏黎世毒理学研究所引进。特点：远交系小鼠，毛色白化。适应性强，体格健壮，繁殖力强，生长速度快，实验重复性较好，雌鼠自发性畸胎瘤和管状腺瘤发病率为0%~1%，用氨基甲酸乙酯诱发时，11~16天胚胎期畸胎瘤和管状腺瘤发病率为5.9%，离乳个体管状腺瘤和囊瘤发生率为30%,孕鼠为3%。是国际通用的封闭群小鼠,我国从美国、日本、英国、瑞士等国引进的ICR，各群体之间在遗传特性方面不可避免地出现了一些差异，在应用时应注意。ICR/JCL小鼠是进行免疫药物筛选，复制病理模型较常用的实验动物。外周血象和骨髓细胞，具有较好的稳定性，是良好的血液学实验用动物。
基于CRISPR/Cas9技术，我们拥有独有的全基因组单/多位点分析设计系统、高通量的gRNA载体组装技术、高效的遗传转化技术和基于云端的测序结果自动化分析体系；具有单基因/多基因敲除、短片段/长片段删除、单碱基/多碱基替换敲入和条件性敲除等多面的基因组编辑技术。特点：简单——只需提供基因ID或序列快速——快50个工作日提供Founder小鼠，全年提供全程服务高效——特有的技术，实现单基因、多基因敲除，条件性敲除，大片段（例如整个外显子区域或者lncRNA）敲除，DNA片段定点敲入（包括定点突变、GFP等标签Tag的敲入）常州卡文斯专业团队为实验鼠提供全程技术支持和售后保障。
实验鼠会不会咬人？咬了之后会不会得病？内心慌张惊恐怎么办？一般在受到惊吓的情况下小鼠才会咬人。其中黑色小鼠比白色小鼠更加“凶残”一些。但是，只要你克服了心理恐惧，再加上正确的手法，小鼠轻轻松松get到手。就算小鼠咬到你了，请不要担心，因为它们的居住环境比人类还要干净。通常科研工作者会将实验鼠饲养在专门的动物房中，会有专职人员“伺候”它们的吃喝拉撒。对于更娇贵的免疫缺陷的小鼠来说，它们会依据免疫系统的缺陷程度住在不同SPF(Specific-pathogen-free无特定病原体)级的实验室中，除了不能到处跑，较终要献身科研外，简直生活得不要太幸福，连科研人员见它们一面，都要穿上层层的防护服，通过一道道除菌装置。被咬到之后，千万不要慌张，因为你除了疼和血液流出之外，不会受到其他损失。如果实在控制不住自己的惊恐情绪，也请千万不要把小鼠扔出去！因为它们的天性是贴着角落跑，如果你把它们扔出去，几乎没有再把它们抓回来的可能性了。从某种意义上说，有着这样一种逻辑关系：扔出去的小鼠=抓不住=样品丢失=实验失败=半年白做=毕业更加遥远=头秃+抑郁=危害身心健康！常州卡文斯实验鼠在心血管疾病研究领域具有优异建模能力。MMTV-PyVT小鼠公司排名
常州卡文斯实验鼠以稳定的遗传背景和高效的疾病模型著称。OT1小鼠技术指导
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。OT1小鼠技术指导
