大鼠的抓取固定大鼠的抓取斯基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指，抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。如果进行腹腔、肌肉皮下等注射和灌胃时，同样可采用左手固定法，只是用拇指和食指捏住鼠耳，余下三指紧捏鼠背皮肤，置于左掌心中，这样右手即可进行各种实验操作。也可伸开左手之虎口，敏捷地从后，一把抓住。若做手术或解剖等，则需事先麻醉或处死，然后用细棉线绳活缚腿，背卧位绑在大鼠固定板上；尾静脉注射时的固定同小鼠（只需将固定架改为大鼠固定盒即可）。注意事项：为了减少或避免大鼠在实验中发生的应激反应，以减少对实验者的攻击损伤，这里介绍几种抓取大鼠的技巧改进：（1）在抓取前可用一条清洁的毛巾蒙住大鼠全身，大鼠处于黑暗状态下神经会有所放松，看不到实验者的动作也会降低对实验者的攻击机会；（2）一般抓取大鼠都会抓住尾巴，但是有时大鼠尾巴不在身后而在其面前，这时实验者可能在抓取鼠尾的时候被大鼠攻击。这种情况一般可以轻推其腰臀部，使之变换姿势，待鼠尾调整到身后再进行抓取；（3）由于大鼠尾部被抓起时，会应激性地排便、排尿，所以比较好在粗糙表面上垫上报纸等，做好防范措施，减轻工作量。常州卡文斯实验鼠以专业、高效的服务支持全球生命科学研究。II型糖尿病小鼠繁育
实验动物常见的给药物使用方法式有：口服、静脉注射、腹腔注射、皮下注射、肌肉注射、椎管内注射、脑室内注射、皮内注射、淋巴腔注射、鼻腔和舌下给药等多种灌胃法经验总结：1.在操作过程中较重要的是小鼠的固定，注意头一定要固定好，头和躯体要保持一条直线，并且灌胃时使小鼠成竖直位，头向上。2.把握要领，动作尽量迅速，减少小鼠的不适感。3.小鼠灌胃剂量：0.1ml/10g体重：一只20g的小鼠，一般一次灌胃0.2ml。4.操作前将灌胃针安在注射器上大致测量一下从口腔到胃内的位置(较终一根肋骨后缘)的长度,根据此距离确定插入深度,成年小鼠插入大约3厘米。5.固定好小鼠,身体比较好伸展在一条直线，太松会动，太紧就把小鼠脖子勒住了。一般沿口角进针，抵达咽部会有抵触感，小鼠会有吞咽动作，此时阻力丧失，可继续下行。OT1小鼠公司排名卡文斯实验鼠在老年病学研究中的建模效果明显。
SD(SpragueDawley）大鼠主要用途：广阔用于药理、毒理、药效及GLP实验，营养学及内分泌系统的研究。简介：1925年，美国斯泼累格。多雷(SpragueDawley)农场用Wistar大鼠培育而成。生长快，繁育性能好，大多用于安全性试验及营养与生长发育有关的研究。特点：头部狭长、尾长接近于身长，产仔多，生长发育较Wistar为快。10周龄时雄鼠体重可达300~400g,雌鼠达180~270g。性情比Wistar大鼠稍为凶猛。对疾病的抵抗力较强，尤其对呼吸道疾病的抵抗力很强。自发性肿块瘤体的发生率较低。对性内分泌物质敏感性高。
实验鼠是目前应用较为广阔的一种实验动物，在探寻基因基础功能、疾病发病机制和药物临床前筛选等方面有着十分重要的作用。然而在实验鼠（比如SD大鼠、C57小鼠）手术造模或术后给药观察的过程中，经常发现实验鼠啃咬或舔舐皮肤上的缝线、敷料、药物或伤口，导致实验无法进行，这是让实验人员非常头疼的问题。收集了下网友遇到的问题比如：大鼠术后伤口被抓挠舔舐？缝线被咬破？小鼠皮炎或创面的敷料难固定？烫伤后伤口包扎被咬掉？小鼠舔舐背部创口或药物？小鼠创面应用水凝胶用皮钉固定依旧被啃掉？小鼠对药膏味道敏感一直舔食？大鼠术后啃咬伤口缝线（包括腹部、背部）？大小鼠背部皮肤给药后一直抓挠舔舐？卡文斯实验鼠在心血管疾病研究领域具有优异建模能力。
常用动物实验选择1.名称：KM小鼠主要用途：广泛应用于药理学、毒理学等领域研究以及药品、生物制品的生产与检定。简介：1926年美国Rockfeller研究所从瑞士引入白化小鼠培育成Swiss小鼠。1944年3月17日由汤飞凡教授从印度Hoffkine研究所引进Swiss小鼠，饲养在昆明国家防疫处。由于该小鼠起初引入地是昆明，故称之为昆明小鼠。解放后国家防疫处迁回北京天坛，更名为卫生部生物制品研究所。1950年小鼠随之引到北京天坛（检定所现址），当时保种9对。1953年10月移至北京东郊，1954年扩种，相继引到其他单位，现已遍布全国各地。特点：远交系小鼠，经50多年的选育，现在KM小鼠zl自发率极低。不同地饲养的昆明小鼠封闭群的生长发育与繁殖性能存在一定差异。但其共同特点是抗病力和适应力很强，繁殖率和成活率高。它在我国生物医学动物实验中约为小鼠总用量的70%。常州卡文斯实验鼠运输全程温控，保障动物健康状态。ob/ob小鼠应用
实验小鼠在新物体识别实验中，对陌生物体的探索时间占比超过 50%，表明具备识别能力。II型糖尿病小鼠繁育
腹腔注射操作步骤：1.抓取小鼠一般都是放在饲养笼上，提其尾巴中部，水平偏下往后轻拉，小鼠爪子会自然会抓住笼子，此时应该迅速抓住小鼠的颈背部的皮毛，比较好是抓在小鼠的耳朵处，这样可以更好固定小鼠的头部，以防被咬。但是，切记力气不要过大，容易使小鼠窒息。再将小鼠的尾巴用左手无名指或小拇指固定，这样就可以将小鼠整个躯干固定好，注意一定要让小鼠处于一个舒服的身身体部位置，如果小鼠躯干不能保持竖直，很容易扎到脏器，引起出血，影响实验。2.注射抓取小鼠后，应腹部向上，头呈低位。头呈低位可以使得脏器移至低位，避免扎伤。右手持注射器，插入小鼠腹部，注射部位为小鼠后肢根部连线处任一侧1.5cm处，缓慢以45度左右进针，进针深度小于1cm，进针的感受为局部皮肤凹陷消失和落空感。3.拔针：为了防止漏液，轻微旋转针头，再缓缓拔出。在实验前，准备酒精棉球，注射器在使用后要消毒才能给下一只小鼠使用，避免交叉染上。此外，注射前，也可以用酒精棉球擦拭小鼠皮肤，可以明显辨别药物是否注射到腹腔，如果看到鼓包，就是注射到皮下了。II型糖尿病小鼠繁育
