染色体当细胞从间期进入有丝分裂期，间期细胞微管网络解聚为游离的αβ-微管蛋白二聚体，再重组成纺锤体，介导染色体的运动；分裂末期纺锤体微管解聚，又重组形成细胞质微管网络。可分为：动粒微管：连接染色体动粒于两极的微管。极间微管：从两极发出，在纺锤体中部赤道区相互交错的微管。星体微管：中心体周围呈辐射分布的微管。染色体的运动依赖纺锤体微管的组装和去组装。在这一过程中动粒微管与动粒之间的滑动主要是依靠结合在动粒部位的驱动蛋白和动力蛋白沿微管的运动来完成。极微管在纺锤体中部交错，有些分布在极微管之间特殊的双极马达蛋白，其中2个马达蛋白沿一条微管运动，另2个马达结构域沿另一条微管运动。由于2条微管分别来自二极，故极性相反。当双极驱动蛋白四聚体沿微管向正极运动时，纺锤体二极间距离延长。反之纺锤体距离缩短。纺锤体微管网络的复杂性保证了染色体分离的准确性。偏光成像纺锤体卵质量评估
纺锤体的完整性决定了染色体分裂的正确性。在有丝分裂前期，中心体被复制形成两个中心体，并逐渐分离，形成两个纺锤体。纺锤体的微管从中心体发出，与染色体上的着丝粒（kinetochore）结合。着丝粒是一组复杂的蛋白质结构，可以与微管的末端结合。当纤维束的微管末端与着丝粒结合时，纤维束开始缩短，将染色体拉向两端，实现染色体的精确分离。这一过程不仅确保了每个新细胞都能获得正确数量的染色体，还保证了遗传信息的稳定传递。上海哺乳动物纺锤体玻璃底培养皿显微镜下的纺锤体，如同精密的分子机器，引导染色体分离。
无需染色纺锤体观察技术能够实时监测冷冻过程中纺锤体的形态变化，从而准确评估冷冻保存的效果。通过对比冷冻前后纺锤体的形态和稳定性，研究者可以优化冷冻保护剂的配方和浓度，以及改进冷冻程序，减少冷冻损伤，提高解冻后卵母细胞的存活率和发育潜能。解冻后的卵母细胞在无需染色的情况下，可以直接通过Polscope系统进行纺锤体观察。这一技术能够迅速评估解冻后卵母细胞的质量，包括纺锤体的形态、位置、稳定性等关键指标，为后续的受精和胚胎发育提供重要参考。
秋水仙素为什么会使有丝分裂的细胞停滞于中期如果用秋水仙素处理有丝分裂的细胞，纺锤体会迅速消失，细胞停滞在有丝分裂中期，染色体无法分离成两组。用秋水仙碱进行诱导，从而将细胞阻断在细胞分裂中期，也是诱导细胞周期同步化的重要方法之一。真核细胞周期可分为4个时期，分别是G1期、S期、G2期和M期。在细胞周期调控中主要有3个控制点，***个控制点在G1期，决定细胞能否进入S期；第二个控制点在G2期，决定细胞能否进入有丝分裂期；第三个控制点在M期，决定细胞是否已经准备好将复制好的染色体拉向两极。CDK（周期蛋白依赖性蛋白激酶）对细胞周期运行起着**性调控作用，CDK与不同时期的周期蛋白结合会在特定周期起调节作用。cyclinA、cyclinB是在M期起调节功能的两种主要周期蛋白。细胞周期运转到分裂中期后，在后期促进复合物(APC)的作用下，M期cyclinA和cyclinB通过泛素化途径迅速降解，Cdkl活性丧失，细胞周期便从M期中期向后期转化。APC活性变化是细胞周期由分裂中期向后期转换的关键因素，其活性受到多种因素的综合调节，纺锤体组装检查点是其重要的调控因素。纺锤体组装不完全，或所有动粒不能被动粒微管全部捕捉，则APC不能被***。纺锤体在细胞分裂完成后迅速解体，为细胞质分裂提供空间。
通过抑制细胞周期重新进入，可以减少神经元的细胞凋亡，保护神经元的存活。例如，使用细胞周期抑制剂（如CDK抑制剂）可以抑制细胞周期重新进入，减少神经元的细胞凋亡。此外，通过促进神经元的细胞周期退出，也可以减少神经元的细胞凋亡。通过改善线粒体功能，可以恢复能量代谢，保护神经元的存活。例如，使用线粒体功能增强剂（如辅酶Q10）可以改善线粒体功能，恢复能量代谢。此外，通过减少线粒体的氧化应激，也可以改善线粒体功能。纺锤体微管的排列方向决定了染色体分离的方向。非侵入式成像纺锤体揭示卵母细胞关键结构
纺锤体在细胞分裂过程中与细胞骨架协同工作。偏光成像纺锤体卵质量评估
体外构建的纺锤体模型可以用于研究纺锤体的动态变化，如微管的聚合和解聚、染色体的捕捉和分离等。通过高分辨率显微镜观察，可以详细记录纺锤体的动态变化过程，揭示其背后的分子机制。体外构建的纺锤体模型可以用于研究纺锤体的功能机制，如纺锤体检查点的调控、染色体分离的分子机制等。通过添加不同的蛋白和药物，可以模拟不同的生理和病理条件，探究纺锤体功能的调控机制。体外构建的纺锤体模型可以用于研究纺锤体缺陷的后果，如染色体非整倍性的发生、细胞周期的紊乱等。通过引入特定的突变或药物，可以模拟纺锤体缺陷的情况，探究其对细胞分裂和基因组稳定性的影响。体外构建的纺锤体模型可以用于筛选和验证药物，如抗病毒药物等。通过测试药物对纺锤体动态变化和功能的影响，可以评估药物的效果和安全性，为新药的研发提供实验依据。 偏光成像纺锤体卵质量评估
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