染色体
当细胞从间期进入有丝分裂期，间期细胞微管网络解聚为游离的αβ-微管蛋白二聚体，再重组成纺锤体，介导染色体的运动；分裂末期纺锤体微管解聚，又重组形成细胞质微管网络。
可分为：动粒微管：连接染色体动粒于两极的微管。
极间微管：从两极发出，在纺锤体中部赤道区相互交错的微管。
星体微管：中心体周围呈辐射分布的微管。
染色体的运动依赖纺锤体微管的组装和去组装。在这一过程中动粒微管与动粒之间的滑动主要是依靠结合在动粒部位的驱动蛋白和动力蛋白沿微管的运动来完成。极微管在纺锤体中部交错，有些分布在极微管之间特殊的双极马达蛋白，其中2个马达蛋白沿一条微管运动，另2个马达结构域沿另一条微管运动。由于2条微管分别来自二极，故极性相反。当双极驱动蛋白四聚体沿微管向正极运动时，纺锤体二极间距离延长。反之纺锤体距离缩短。 纺锤体微管与染色体之间的相互作用是细胞分裂的重点事件。北京卵母细胞纺锤体纺锤体结构
卵母细胞冷冻保存主要采用两种方法：慢速冷冻法和玻璃化冷冻法。相较于传统的慢速冷冻法，玻璃化冷冻法因其更高的解冻存活率和妊娠成功率而逐渐成为主流技术。玻璃化冷冻法的基本原理是将含有生物样本的溶液在极短的时间内（如几分钟内）冷却至液氮温度，使溶液在凝固点以下形成无冰晶的半固体或固体状态。这种方法避免了冰晶形成对细胞结构的破坏，从而减少了冷冻损伤。在卵母细胞冷冻保存中，玻璃化冷冻法通过优化冷冻保护剂的浓度和冷冻速率，使卵母细胞在冷冻过程中保持其结构的完整性。美国无需染色纺锤体胚胎植入纺锤体的形成需要多种蛋白质的精确协作与调控。
为了减少冷冻过程中纺锤体的损伤，研究者们尝试在冷冻液及解冻液中添加细胞骨架保护剂，如紫杉醇（Taxol）。紫杉醇能够稳定微管结构，防止其在低温下解聚。通过偏光成像技术，研究者可以实时监测紫杉醇对纺锤体的保护效果，评估其在冷冻保存过程中的作用机制。此外，还可以进一步观察解冻后卵母细胞的发育潜能，为临床应用提供可靠依据。无需对细胞进行固定和染色，保持细胞的活性与完整性。能够实时监测纺锤体的形态变化，评估冷冻效果。能够捕捉到细微的纺锤体形态变化，提高评估的准确性。
纺锤体功能分解
在细胞分裂中，其主要作用有两个部分。其一为排列与分裂染色体。纺锤体的完整性决定了染色体分裂的正确性。纺锤体的正常生成是染色体排列的必要条件。纺锤体生成完毕后一般会有5-20分钟的延迟，以供细胞调整着丝点上微管束的极性，以及决定是否所有的着丝点都附着正确。此后细胞进入分裂后期，染色体分裂为两组数目相等的姐妹染色单体。同样，纺锤体的完整性决定这个分裂过程在时间和空间上的准确性。
纺锤体另一功能为决定胞质分裂的分裂面。染色体分裂的同时，纺锤体中的一部分微管不随染色体分裂到两极，而停弛在纺锤体**， 形成纺锤**体(central spindle)。在纺锤中体的**为两组极性相反的微管交叠的区域，称为纺锤**区(spindle midzone).此**区就是接下来的胞质分裂面。胞质分裂开始于分裂后期的较晚期。胞质分裂一般结束于分裂末期后1-2小时，此期间两个子细胞由中心颗粒体(midbody)连接。 一般认为纺锤体的分解发生在细胞分裂末期。 纺锤体微管网络的复杂性保证了染色体分离的准确性。
玻璃化冷冻技术因其快速冷冻和解冻的特点，在哺乳动物纺锤体卵冷冻保存中展现出巨大优势。该技术通过极快的降温速率和高浓度的冷冻保护剂，使细胞内溶液在冷冻过程中呈玻璃态而非结晶态，从而避免了冰晶对纺锤体的损伤。此外，研究者们还尝试将微流控技术、激光辅助冷冻等新技术应用于卵母细胞的冷冻保存中，以进一步提高冷冻效果。为了准确评估冷冻对纺锤体的影响，研究者们开发了多种纺锤体稳定性评估技术。例如，通过偏光显微镜观察纺锤体的形态变化；利用免疫荧光染色技术检测纺锤体相关蛋白的分布和表达；以及通过分子生物学方法检测纺锤体相关基因的转录和翻译水平等。这些技术的应用为深入研究冷冻过程中纺锤体的变化提供了有力支持。纺锤体微管与细胞内的其他细胞器存在复杂的相互作用。北京Hamilton Thorne纺锤体兼容大部分显微镜
纺锤体微管的动态变化是细胞分裂周期的重要标志。北京卵母细胞纺锤体纺锤体结构
冷冻与解冻过程中涉及多个环节，包括温度控制、时间控制、冷冻保护剂的添加与去除等。这些环节中的任何一步操作不当都可能导致纺锤体损伤。因此，需要不断优化冷冻与解冻技术，以减少对纺锤体的不良影响。近年来，研究者们通过不断尝试和优化冷冻保护剂的配方，取得了进展。例如，甘油、二甲基亚砜（DMSO）等渗透性保护剂被用于哺乳动物卵母细胞的冷冻保存中，它们能够迅速降低细胞内水分含量，减少冰晶形成。同时，一些非渗透性保护剂如蔗糖、海藻糖等也被发现对纺锤体具有一定的保护作用。北京卵母细胞纺锤体纺锤体结构
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