HE染色实验步骤:(1)样品制备:对于贴壁生长细胞,胰酶消化,调整细胞浓度约1×105/ml,滴加于盖玻片上(置于6孔板中),培养相应时间后,取出细胞爬片,用PBS洗涤3次。(2)样品固定:95%乙醇固定20min,PBS洗涤2次,每次1min。(3)染核:苏木素染液染色2-3min,自来水洗涤。(4)分色:镜下观察,若细胞核染色过深,用1%盐酸酒精溶液分色数秒,自来水洗涤。(5)染胞质:浸入伊红染液染色1min,自来水洗涤。(6)吹干或自然晾干细胞爬片后,中性树胶封片。若细胞用4%多聚甲醛固定,则染色时间相应延长,苏木素染色12-15min,伊红5min即可比较基础的病理染色HE染色。上海推荐的HE染色报告
HE染色伊红着色淡分析及应对原因:(1)伊红染液的pH值可能大于5;(2)蓝化液残留过多;(3)切片太薄;(4)切片经伊红染色后在乙醇脱水时间过长。对策:检查伊红染液的pH值,如果必要的话,用乙酸将其调节在4~5之间,从而使伊红染色彩艳丽。确保每次蓝化步骤完成后,使用的弱碱性溶液被充分洗去,玻片上没有残留的弱碱性溶液。检查切片的厚度。脱水时不要让切片在低浓度乙醇停留时间过长,因为含水多的低浓度乙醇会将伊红的颜色分化掉。上海推荐的HE染色报告冰冻切片是否可以做HE染色?
HE染色:在组织病理学中,苏木素-伊红染色是一种日常使用比较普遍的常规染色方法。常规苏木素染色的对比染色是用伊红,也有采用焰红,因为焰红比伊红色泽更鲜明,还有采用橘黄G,比布里希猩红,波尔多红等作为对比染色。伊红是比较常用的胞质染料,本身溶于醇而不溶于水,为砖红色粉末状或酱红色结晶。配方:伊红Y(水溶)0.5-1g,蒸馏水99ml。如果取用伊红Y(醇溶性)应当溶于99ml 75%或95%的乙醇中。如果在伊红液中加入0.5ml冰醋酸,可以加速其染色过程,使得胞质的色泽更加艳丽。结果是细胞核呈蓝色,胞质、肌肉、结缔组织、红细胞和嗜伊红颗粒呈不同程度的红色。钙盐和各种微生物也可染成蓝色或紫蓝色。
HE染色碱染料染主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着色。学上常用的一种染色方法为苏木精 伊红染色法。苏木精 伊红染色法 ( hematoxylin-eosin staining ) ,简称HE染色法 ,石蜡切片技术里常用的染色法之一 。苏木精染液为碱 ,主要使细胞核内的染色质与胞质内的核糖体着紫蓝色 ;伊红为酸染料 ,主要使细胞质和细胞外基质中的成分着红色 。细胞核被苏木精染成鲜明的蓝色,软骨基质、钙盐颗粒呈深蓝色,粘液呈灰蓝色。细胞浆被伊红染成深浅不同的粉红色至桃红色,胞浆内嗜酸颗粒呈强的鲜红色。胶原纤维呈淡粉红色,力纤维呈亮粉红色,红血球呈橘红色,蛋白液体呈粉红色。HE染色,即是苏木精-伊红染色法,是形态学比较常用的染色方法。
HE染色细胞质过染分析及应对原因:(1)伊红染色液浓度太高,特别是焰红燃料、四溴四氯荧光素钠的存在;(2)切片在伊红染色时间过长;(3)切片在伊红染色后经乙醇脱水步骤时过的太快,而使乙醇分化伊红的作用不能产生。对策:适当稀释伊红染色液,减少伊红染色时间,或者使切片在乙醇脱水等步骤时,停留时间相对均匀。同样,也要检查切片的厚度是否合适。切片中出现蓝黑色沉淀物分析及应对原因:苏木精染色液中的金属膜,黏附在玻片上。对策:每天染色前仔细过滤苏木精染色液,或建议使用半氧化苏木精染色液,如Gill苏木精染色液,可以避免过多的金属膜产生。HE染色技术几种常见的染色问题。上海推荐的HE染色报告
HE染色的基本原理和结果分析。上海推荐的HE染色报告
HE染色脱蜡不净的原因及验证方法:1)二甲苯使用过久,含蜡成分太高或脱蜡效果差:可更换二甲苯验证。2)切片经烤片,冷却后放入二甲苯脱蜡或室温太低;延长拖拉时间或用热的切片脱蜡验证。3)脱蜡时间太短或振荡太少,幅度太小;可延长脱蜡时间或以多振荡来验证。4)洗涤二甲苯用的乙醇使用时间过久,导致乙醇中二甲苯含量过高,二甲苯残留在切片上(由于二甲苯与水不相溶,切片上有二甲苯的地方,苏木精就没有办法渗透进去,在切片染色完成后留下了点状的不着**域):更换各道乙醇验证。5)二甲苯、乙醇质量不佳(偶有试剂瓶内装的试剂与试剂名不相符):换批号验证。6)更换脱蜡液体时试剂拿错:需重新配置验证。7)更换脱蜡液体时试剂次序放错:需重新配置验证。8)烤片时间短,切片上水分没有烤干,也会导致着色不匀,出现点状发白区域。上海推荐的HE染色报告