支原体检测中的PCR法和LAMP方法各有其优势和劣势,以下是两种方法的比较:
PCR法
优势:
1.高灵敏度:PCR法可以扩增支原体DNA,具有很高的灵敏度。
2.操作简便:PCR操作相对简单,结果准确,速度快,通常3个小时左右即可得到结果。
3.可靠性:PCR法已成为日常细胞培养维护的可靠方法,是细胞样本库保护细胞的方法。
劣势:
1. 样品量需求:相对于某些快速检测方法,PCR可能需要较多的样品量。
2. 检测周期:尽管PCR法相对快速,但在某些情况下,检测周期可能较长。
LAMP法
优势:
1. 设备简单:只需要一个稳定的恒温环境,如恒温水浴或热拟温器,不需要复杂的温度控制设备。
2. 高特异性:LAMP技术采用多个特异性引物,提供了较高的特异性。
3. 结果可视化:LAMP扩增产物可形成肉眼观察的颜色产物,有助于直接观察扩增结果。
劣势:
1. 引物设计复杂:需要设计多个引物,包括外部引物、内部引物和环引物,引物设计较为复杂。
2. 避免污染:由于没有封闭系统,避免污染造成的假阳性是一个问题。
支原体污染的来源有哪些?上海细胞培养支原体去除试剂货期
细胞培养中,支原体检测的重要性体现在以下几个方面:
1. 高污染发生率:支原体对培养细胞的污染发生率非常高,据估计平均发生率在60%左右。
3. 隐匿性强:支原体污染具有很高的隐匿性,早期不容易被发现,除非使用特异性和灵敏度都非常高的专业检测试剂盒。
3. 影响实验结果:支原体污染会改变细胞的生理性质,影响实验结果的准确性。细胞培养物一旦被支原体污染,会改变细胞DNA、RNA及蛋白表达,导致实验数据不准确、不稳定。
4. 难以通过肉眼或常规方法发现:支原体污染无法通过肉眼检查细胞来发现,也不能通过向培养基中加入抗*素控制。
5. 对细胞培养数据可靠性的影响:支原体污染会降低细胞系的有效性,使得细胞培养数据失去可靠性,无法为生命科学研究提供有意义的数据。
6. 预防和控制污染的必要性:定期进行支原体检测是细胞培养实验室进行自我质量监控的必要组成部分,有助于及时发现并控制污染,保证实验的准确性和重复性。
7. 避免细胞株受损:支原体污染可能导致细胞株受损,影响细胞株的质量和研究价值。及时检测和清*支原体污染有助于保护珍贵的细胞资源
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细胞培养中支原体污染的检测方法有多种,以下是一些常用的检测手段:
1. 显微镜检测:通过相差显微镜观察细胞,支原体在细胞表面和细胞之间会呈现为暗色微小颗粒。
2. 荧光染色法:使用荧光染料Hoechst 33258与DNA特异性结合,使支原体的DNA着色,然后在荧光显微镜下观察。染色后的支原体会在细胞周围或附于细胞膜表面显示为亮绿色小点。
3. 电镜检查:使用扫描电镜或透射电镜观察,这是一种简便快速的方法。
4. 聚合酶链反应(PCR):使用特定的引物对支原体DNA进行扩增,是一种高灵敏度的检测方法。
5. 等温扩增法:基于LAMP技术,室温反应后观察颜色变化确认是否有支原体污染。
支原体污染一旦发生,不仅对细胞培养造成严重影响,甚至可能导致实验结果失真。而且支原体污染在细胞培养实验中相当常见。因此,预防措施是确保细胞培养环境和实验结果可靠性的重要手段。
01/ 良好的无菌技术及实验操作,保证操作不会引入新的污染
02/ 保持实验空间的清洁
03/ 确保从可靠的来源获取细胞,减少不同细胞之间的交叉传染
04/ 防止交叉污染
05/ 减少气溶胶生成
06/ 谨慎使用抗*素
07/ 定期支原体筛查
08/ 丢弃或处理受到支原体污染的细胞
09/ 保持良好的记录
支原体预防主要是什么成分?
LAMP法,即环介导等温扩增法(Loop-mediated isothermal amplification),在支原体检测中的应用具有以下特点和应用场景:
1. 日常监测:由于LAMP法的快速和简便性,它适用于生物实验室的日常监测,可以及时检测出支原体的存在,确保实验结果的准确性和可靠性。
2. 疾病诊断:LAMP法已被成功应用于SARS、禽流感、HIV等疾病的检测中,并在2009年甲型H1N1流感事件中发挥了重要作用。
3. 临床应用:LAMP法在临床样本的检测中显示出了快速、高灵敏度和稳定性,可以用于检测实验室样本及临床样本中的支原体。
4. 多病原体检测:LAMP法可以同时检测多种病原体,包括肺炎支原体在内的多种下呼吸道感*的病原体,为临床诊疗提供询证依据。
5. 与其他技术结合:LAMP法可以与CRISPR-Cas12a等其他技术结合,建立新的检测方法,提高检测的效率和准确性。
支原体检测假阳性的原因?深圳细胞培养支原体预防价格
什么样的客户需要定期检测支原体污染?上海细胞培养支原体去除试剂货期
细胞培养中支原体检测出现假阳性结果可能由以下原因引起:
1. 扩增产物污染:PCR扩增产生的大量DNA拷贝若未妥善处理,极微量的污染就可能导致假阳性结果。
2. 引物设计不当:引物设计不够特异性,可能会与非目标序列发生反应,导致非特异性扩增。
3. 试剂质量问题:使用的dNTPs、引物、DNA聚合酶等试剂质量不佳,可能引起非特异性扩增或假阳性结果。
4. 操作技术问题:实验操作不规范,如混合样本、标签错误或样本标识不清等,可能导致假阳性结果。
5. PCR反应条件设置不当:不恰当的PCR反应条件,如温度和时间选择不当,可能导致非特异性扩增。
6. DNA污染:PCR环境中的DNA污染会干扰结果,导致假阳性
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