肝纤维化模型实验动物模型
1.诱导方法：1)成年雄性小鼠40%CCL4，皮下注射或灌胃5mL/kg。每三天/次，连续8周。成年雄性大鼠皮下注射60％CCl4（3ml/kg），每周2次，共9周。2)成年雄性大鼠1％二甲基亚硝胺DMN（10mg/kg），1次/d，2次/周，连续4周。3)成年雄性大鼠腹腔注射硫代乙酰胺（100mg/kg）隔日腹腔注射1次，连续13周。4)成年大鼠，灌胃给白酒7g/kg体重，每日晨1次，连续24周。
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实验动物模型的分类。人类疾病动物模型种类很多，可按不同情况进行分类，按产生原因分类，按系统范围分类，按模型对象分类，按中医体系分类。这里只列举按产生原因分类的情况。按产生的原因可分为自发性动物模型和诱发性动物模型。
自发性动物模型：突变性动物模型(mutantanimalmodels)：指未经任何人工处理，利用动物在自然条件下发生疾病来用作模型。抗病性动物模型(negativeanimalmodels)：是指特定的疾病不会在某种动物身上发生，从而探讨为何这种动物对该病有天然的抵抗力。异构性动物模型(differentconstructanimalmodels)：是指利用健康动物生物学特征来提供疾病模型。培育性动物模型(breedinganimalmodels)：是指通过遗传育种手段将基因突变异常表现保留下来用作疾病模型。 内蒙古推荐实验动物模型制作方法英瀚斯生物，可做实验动物模型行为学分析。
裸鼠瘤模型是比较常见和常用的一种瘤动物模型，它在皮下移植瘤瘤模型的建立中起到重要作用。裸鼠瘤模型的接种一般有细胞接种和瘤块接种两种方式。裸鼠移植瘤模型的建立具有建立周期短、成瘤率高、易于操作、成本低的优点。
造模方法：
1、细胞是贴壁细胞，细胞培养在RPMI-1640培养基中细胞传代培养：当细胞长至80-90%时，去除培养基，加入PBS洗1-2次，去除PBS后，加入1ml胰酶消化1-3min后，加入3ml完全培养基中和胰酶终止消化，将消化的细胞转移至15ml离心管中，1000rpm离心5min。倒掉上清后，加入3ml培养基重悬细胞，1:3传代至培养皿中培养。
2、将长到培养皿80%-90%的细胞用胰酶消化下来，1000rpm离心，去除上清，加入完全培养基重悬细胞，将细胞分别种在6孔板中，每孔种1×105个细胞。
3、将细胞进行扩增培养，对细胞进行计数，将数量调整为2×107个细胞/ml。5、8周龄15只裸鼠适应性饲养7天后，随机分为3组，每组分别在右腋皮下接种2×106（100ul/只）细胞。接种约两周后出现结节，每周瘤大小两次。将裸鼠放入鼠笼中正常饲养4周后处死裸鼠，取裸鼠瘤拍照冻存。
1.如何挑选实验动物模型公司？
答：可以的话实地看下，有自己的动物房可以的话，方便长期饲养。以及有配套的病理、分子检测平台更好，可以整体课题全包，省得动物运输麻烦。在英瀚斯生物做过，一站式的还不错。
答：看你做什么模型了，难度大的可能需要技术人员摸索条件，可以的话面谈参观实验室，甚至可以一起做个预实验。
答：看下动物房条件、卫生状况、空调。裸鼠的话需要IVC动物房。还有造模以及检测设备等。之前在南京英瀚斯做的，脑立体定位注射、水迷宫什么的设备都有。 实验动物模型在哪买？
蛛网膜下腔出血系由脑底或脑表部位的血管破裂，血液破入蛛网膜下腔引起。颅内动脉瘤，脑动、静脉畸形，血压高动脉硬化等为常见病因。蛛网膜下腔出血后可引起脑血管痉挛。因此，蛛网膜下腔出血和迟发性脑血管痉挛的模型有许多共同之处，造模时可同时作为参考。
英瀚斯熟练掌握蛛网膜下腔出血造模，及其他动物模型。
复制方法 ：健康大鼠，雌雄不拘，体重为250～350g。将钓鱼线剪成长约50mm，并在18mm处作标记，酒精消毒后置于无菌生理盐水中备用。麻醉后仰卧固定，剃除颈部毛发，手术区域皮肤消毒。颈正中切口，分离右侧颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉，结扎、切断颈外动脉分支及颈总动脉分叉处小动脉，并游离颈外动脉主干，沿着颈内动脉暴露翼腭动脉，在颈外动脉残端放一丝线，使其呈一松结。在翼腭动脉起始部置一微动脉夹，同时夹闭颈总动脉及颈内动脉主干近端。在颈外动脉残端剪一小口，将制备好的栓线插入。此时将颈外动脉残端处丝线的松结拉紧，除去颈内动脉的动脉夹，继续将丝线沿着颈内动脉插入，直至感到有阻力，这时稍用力再插入1.0～1.5mm后有落空感即可抽出丝线并除去微动脉夹。栓线的直径及插入的深度根据动物的体重而定。 英瀚斯生物 专业的实验动物模型构建平台。江苏构建实验动物模型
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肾小管坏死小鼠模型
【操作步骤】BALB/c小鼠，放置在每升空气中含有5mg的氯仿的环境中，持续3h后，可引起不同程度的肾坏死。
【结果分析】出生46～106d的雄性小鼠发生率可高达90％以上。持续在氯仿气雾中24h，动物肾脏组织学观察，肾***损害且肾小管明显坏死。
急性肾小管坏死大鼠模型
【操作步骤】SD或Wistar大鼠，体重190～250g，实验前置于代谢笼中饲养，记录食物、饮水和尿量。实验时由尾静脉注射**1.0mg/kg。24h后出现急性肾小管坏死表型。
【结果分析】尾静脉注射**24h后，尿量明显减少，尿渗透浓度降低，且出现细胞学的改变，近曲小管的末端部分可见肾坏死灶。
4-硝基儿茶酚等制剂引起的肾坏死模型
【操作步骤】成年雄性SD或Wistar大鼠，实验前置于代谢笼中饲养，测12h的尿量和尿中的酸性磷酸酶、碱性磷酸酶、乳酸脱氢酶、谷氨酰脱氢酶的正常排泄水平。可选用下列不同药品给大鼠进行腹腔注射，造模。(1)硝酸钠：2.5mg/(ml·100g)；(2)4-硝基儿茶酚：1mg/(ml·100g)；(3)4-硝基茶胂酸；2.5mg/(ml·100g)；(4)4-氨基儿茶酚：1.5mg/(ml·100g)。用药后12h测定尿量和尿酶量。
【结果分析】肾中毒的大鼠尿量普遍减少。肾组织表现***损害和肾小管明显坏死。 江苏构建实验动物模型
