蛛网膜下腔出血系由脑底或脑表部位的血管破裂，血液破入蛛网膜下腔引起。颅内动脉瘤，脑动、静脉畸形，血压高动脉硬化等为常见病因。蛛网膜下腔出血后可引起脑血管痉挛。因此，蛛网膜下腔出血和迟发性脑血管痉挛的模型有许多共同之处，造模时可同时作为参考。
英瀚斯熟练掌握蛛网膜下腔出血造模，及其他动物模型。
复制方法 ：健康大鼠，雌雄不拘，体重为250～350g。将钓鱼线剪成长约50mm，并在18mm处作标记，酒精消毒后置于无菌生理盐水中备用。麻醉后仰卧固定，剃除颈部毛发，手术区域皮肤消毒。颈正中切口，分离右侧颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉，结扎、切断颈外动脉分支及颈总动脉分叉处小动脉，并游离颈外动脉主干，沿着颈内动脉暴露翼腭动脉，在颈外动脉残端放一丝线，使其呈一松结。在翼腭动脉起始部置一微动脉夹，同时夹闭颈总动脉及颈内动脉主干近端。在颈外动脉残端剪一小口，将制备好的栓线插入。此时将颈外动脉残端处丝线的松结拉紧，除去颈内动脉的动脉夹，继续将丝线沿着颈内动脉插入，直至感到有阻力，这时稍用力再插入1.0～1.5mm后有落空感即可抽出丝线并除去微动脉夹。栓线的直径及插入的深度根据动物的体重而定。 有推荐的实验动物模型供应商吗？贵州常见实验动物模型多少钱
双转基因实验动物模型。利用基因打靶技术培育出的APP/PS-1双转基因鼠，在3月龄时出现学习记忆障碍、Aβ增多和形成SP，6月龄时即可出现严重的学习记忆力衰退、认知功能障碍，神经元变性和突触丢失等多种AD病理特性。对AD 病理特征Aβ和SP方面的研究主要采用APP/PS-1双转基因鼠。但其外源性基因表达不够稳定性、动物价格高。
APP/PS1/Tau 三转因模型。APP/PS1/Tau 三转基因小鼠模型是由APPSwe、PS1、TauP301L基因系突变建立的，首先在皮质区和出现Aβ异常沉积、SP 和NFTs 形成，随后海马区也逐渐出现 Aβ沉积、SP和NFTs，以及突触丢失、神经元变性AD临床病理表现。APP/PS1/Tau三转基因小鼠模型是目前与AD 病理特征接近的转基因动物模型，但其外源性基因表达稳定性较差、造模较困难且造价高。 河南大鼠实验动物模型外包英瀚斯生物 专业的实验动物模型构建平台。
卵巢早衰模型的建立
临床的卵巢早衰(POF)是指卵巢功能提前减退，常见为女性在40岁以前出现闭经，以闭经，不育，雌***缺乏以及**水平升高为特征的一种疾病。在人群中发病率为1%~3%，在继发性闭经中占2%~10%，诊断以至少半年或半年以上闭经多次发生，排除其他原因为基础，卵巢早衰是妇科分泌领域的常见病。
英瀚斯生物可承接各种生殖系统相关实验动物模型。
一．实验方法：
方法一：顺铂诱导大鼠卵巢早衰模型取雌性8周龄SD大鼠，适应性饲养7d。腹腔注射顺铂2mg/kg，连续注射7d。
方法二：环磷酰酸诱导大鼠卵巢早衰模型取雌性8周龄SD大鼠，适应性饲养7d。使用环磷酰酸给予腹腔注射，***次剂量为50mg/kg，以后8mg/kg连续注射14d。
胃溃疡模型
造模方法
其中乙酸法组、假手术对照组因需要手术每组为20只(以免术后意外死亡使这些组别的样本减少)，其余各组为16只。以造模前1日为第0日，造模当天为第1日。除正常对照组外，其余8组于第0日上午7：00同时开始禁食不禁水至第1日上午7：00，达24h。
具体如下：1)空白(正常)对照组：正常饮水、摄食。2)禁食对照组：正常饮水，继续禁食至晚19：00。3)水浸拘束组：早晨7：00开始，将各小鼠置于小鼠固定器中，限制活动，头朝上立于23℃左右的恒温水浴内，水面齐剑突，至晚19：00。4)乙酸组：早晨8：00，**吸入麻醉小鼠，无菌手术开腹，暴露胃，在胃前壁浆膜面窦体交接处同一部位(避开血管)，用浸有冰醋酸，边长为5mm的正方形滤纸接触2次，每次30秒，然后还纳胃体，逐层缝合切口。5)假手术对照组：方法同乙酸法组，滤纸浸生理盐水。乙酸及假手术组交替进行，早11：00前手术结束。6)磷酸组织胺组：上午11：00，灌胃8mg/ml磷酸组胺溶液0.8mg/10g。7)***痛组：下午13：00，皮下注射5mg/ml***痛NaHCO3溶液0.3mg/10g。8)利血平组：下午13：00，皮下注射1mg/ml利血平注射液0.1mg/10g。9)乙醇组：下午18：00，灌胃无水乙醇0.1ml/10g。 英瀚斯生物，可做实验动物模型行为学分析。
研究衰老的物理损伤实验动物模型。动物脑血流量老年期较成年期减少20%以上，脑部慢性缺血、缺氧使脑的正常功能受损，出现认知功能障碍等AD病理性改变。由此理论在实验研究中通过长久结扎双侧颈总动脉血管（2VO）建立的缺血性痴呆动物模型，表现出认知功能障碍明显，淀粉样蛋白前体升高、神经元和脑细胞死亡、tau蛋白过度磷酸化、氧化应激反应和产生慢性炎症等AD病理特征。该动物模型病程较长，在行为学表现上如认知功能障碍与AD比较一致，病理上也高度相似，但引起AD的外因在该动物模型中不能体现出来，另外，2VO动物模型手术操作具有一定难度，模型复制后动物存活率低且时间短，不适合给药周期长的实验研究。另外，还有长久性结扎单侧颈总动脉、去胸腺衰老模型和γ射线致衰老模型、控制性皮质撞击模型、液压脑损伤模型等，由于这些模型在造模方法上复杂、难度高、造模后动物容易死亡、且结果不理想，只在个别特殊目的实验中有所应用。英瀚斯生物 实验动物模型整体外包。河南大鼠实验动物模型外包
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一型糖尿病实验动物模型构建：
胰腺中的胰岛β细胞变性和坏死，分泌的胰岛素不足。
诱导方法一：STZ诱导糖尿病模型。注射前用0.05mol/L柠檬酸(pH4.5)配成2％的STZ溶液，新鲜使用。大鼠糖尿病STZ的剂量为40～75mg/kg(静脉注射或腹腔注射)。小鼠对此药敏感性较差，常用量为100～200mg/kg(静脉注射或腹腔注射)。
诱导方法二：四氧嘧啶糖尿病动物模型四氧嘧啶糖一次腹腔注射150～200mg/kg或静脉注射40～100mg/kg。用药后2～3小时后出现初期高糖，持续6～12小时后进入低血糖期，动物出现痉挛，24小时后一般为持续性高糖期，β细胞呈现不可逆性坏死，发生糖尿病。
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