动物实验外包,行为学检测,Morris实验系统由水迷宫装置、水迷宫图像自动采集和SuperMaze软件/VisuTrack分析系统组成。1、Morris水迷宫装置:主要由装水的水池和一个可调节高度和可移动位置的站台所组成。2、水迷宫图像自动采集和软件分析系统:该系统的主要部件为摄像机、计算机和图像采集卡等。这种系统有多种型号,但工作原理和流程大致相似:摄像头采集大鼠游泳图像(模拟信号)输入到计算机中的图像采集卡进行模/数转换,大鼠游泳的模拟图像转化为数字图像储存于硬盘中,将数字图像进行图像分析得到有关的测试参数。软件分析系统能自动地采集动物的入水位置、游泳的速度、搜索目标等所需时间、运行轨迹和搜索策略等参数,并可将所采集的各种资料进行统计和分析。南京动物实验外包公司,中药灌胃实验。安徽动物实验外包价格
动物实验外包模型介绍:肾动脉狭窄性***动物模型 【造模方法】将犬麻醉后取俯卧位,从脊柱旁 1.5~2cm处开始,右侧顺肋骨缘,左侧在距肋骨缘约两指宽处作 4cm 的皮肤切口,分离皮下组织腰背筋膜,切开内斜肌筋膜,推开背长肌,暴露肾并小心地钝性分离出一段肾动脉,选用一定直径的银夹或银环套在肾动脉上造成肾动脉狭窄,如一侧肾动脉狭窄,则在间隔 10~12 天后将另一侧肾摘除。手术后几天,血压开始升高,1~~3个月后血压升至高峰,并可长期维持下去。例如家兔手术前血压平均值为 13.3kPa,手术后 2 周上升到 16.4kPa,1 个月后升到 18kPa,2 个月后可上升达(18.7~25.9)kPa江苏模型动物实验外包动物实验外包、细胞实验外包,靠谱专业的实验外包平台。
动物实验外包模型介绍:ARDS模型建模方法:模型建立:经腹腔麻醉小鼠,采用暴露式气管切开滴注的方法,经气管向肺内滴注LPS(给药剂量6mg/kg)而后将小鼠直立,垂直旋转小鼠,使药物在肺内均匀分布,从而建立内***性急性肺损伤小鼠模型。或者LPS经尾静脉或者腹腔给药,从而建立全身性炎性反应导致的ARDS模型。在气道滴注LPS6小时、12小时、24小时及48小时后,各取3只小鼠处死并收集支气管肺泡灌洗液(BALF)及肺组织。英瀚斯生物动物实验外包的一站式服务中心。
动物实验外包糖尿病肾病大鼠模型介绍:1型糖尿病动物模型分为三种:第二种allxon诱发的糖尿病动物模型allxon全称四氧嘧啶,它也是一种细胞毒物质,可以通过超氧自由基破坏胰岛β细胞,使得胰岛素分泌减少。一般配成1%-3%浓度即可使用。注射剂量为30-40mg/kg,静脉注射效果较腹腔注射要好。一个需要注意的问题是allxon的注射速度。有人研究过,30s快速静推的成模率比缓慢注射要高。动物呢,还是尽可能全部选用雄性,造模前禁食不禁水12h。这样可以增大动物对allxon的敏感性。注射之后6小时,采用25%葡萄糖水灌胃可以明显地减少动物死亡率。注射后18h,大鼠即可出现***、多尿、多饮等典型症状,血糖会升高至16.67mmol/L以上。随着时间的推移,2周左右即可形成1型糖尿病模型。注意事项:(1)很多研究都显示,注射allxon一个月之后,部分大鼠的血糖会恢复至正常水平,这可能是由于大鼠胰岛代偿作用导致的。这样分析的话,allxon造出的模型可能更加适合短期观察。(2)不要用豚鼠,豚鼠对allxon不感冒,甚至还有抵抗作用。南京动物实验外包公司,胃溃疡模型。
动物实验外包模型介绍:2型糖尿病动物模型高脂高糖饮食加STZ大鼠动物模型前面说了,STZ可以选择性破坏胰岛细胞,且破坏程度与STZ的用量有关。这种模型就是先给大鼠喂高脂高糖饲料,以诱发胰岛素抵抗,随后再腹腔注射小剂量的STZ不完全损伤胰岛β细胞,以诱发分泌障碍;比较终就造成了大鼠2型糖尿病。一直以来,使用高脂高糖饲料造模的各种动物模型,饲料的配方比较关键,大家也比较关注这个问题。可以买商用的饲料,但是有点贵。如果自己配制,可以参考以下配方,该配方来自《人类疾病动物模型的复制》第2版。“猪油10%,2.5%胆固醇,20%蔗糖,1%胆酸盐,66.5%普通饲料。”造模很简单。高脂高糖饲料喂4周;然后25mg/kg的剂量注射STZ(浓度为0.25%),接着继续高脂高糖饲料喂养4周。也可以将STZ剂量提高到30,每周1次,连续2周。都是可行的。验证模型的标准是血糖大于7.8以及胰岛素敏感指数下降。动物实验外包,造模经验丰富,操作熟练。安徽动物实验外包价格
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动物实验外包模型介绍:帕金森(PD)模型6-OHDA致大鼠PD模型的制作:(1)SD大鼠称重,按每笼5-6只饲养。在实验设计的时间点,将大鼠以1%戊巴比妥钠麻醉,待动物失去知觉即可开始操作。(2)大鼠用立体定位仪将双耳及门齿固定。自矢状缝皮肤划开,棉球止血,定位,钻孔,挑破脑膜(以黑质致密部单侧损毁为例,参照Paxinos图谱确定注射坐标,前颅后5.2mm,左侧或右侧旁开2.2mm,进针深7.8mm)。(3)微量注射器注射,以浓度2µg/µL,注射速度1µL/min注射,并留针10min,以1mm/min的速度退针。止血,缝合伤口。在实验动物苏醒的过程中,注意保温,观察各项生命体征。156第四章,神经系统疾病常用动物模型的制作在手术后的数周内,观察动物的进食、体重、行为学变化等情况。单侧损毁的方法,技术上比较成熟,操作较易、死亡率低,模型相对稳定,易区分双侧肢体运动细小异常,能对比患侧黑质的手术前后及与正常侧表现。双侧毁损是较大范围神经化学和行为学损伤,更似人类PD。安徽动物实验外包价格
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